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Phaeostigme Ramosii {Dimerium cum paraphysibus), P. Clemensiae, C h a e - 



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tostigmella papillifera (Phaeodimeriella cum paraphysibus), Bolosphaera 

 subferruginea (nov. gen. Sphaeriacearum), Dimerinopsis luzonensis (nov. 

 gen. Sphaeriacearum), Bakeromyces phiHppinensis (nov. gen. Sphaeriacearum), 

 Chaetosphacria melioHcola, Herpotrichia Bakeri, Neopeckia rhodostoma, Lino- 

 bolus Ramosii (nov. gen. Sphaeriacearum), Aphysa desmodii, Mycosphaerella 

 endospermi, M. lagunensis, Guignardia plectrouiae, Physalospora ficina, Oxydothis 

 aequaUs, Oxydothis livistonae, Qypeosphaeria nigrificans, Linocarpon pandani 

 (nov. gen. Clypeosphaeriacearum), Julella plagiostoma, Hypoxylon MerriUii, Pseudo- 

 nectria bambusina, Hyalocrea epimyces (nov. gen. Nectriacearum), Epi- 

 nectria meliolae (nov. gen. Nectriacearum), Hypocrella viHs, Stereocrea 

 schizostachyi (nov. gen. Hypocreacearum), Epiphyma premnae, Lasiostemma 

 MerriUii (nov. gen. Pseudosphaeriacearum), Uleomyces phiHppinensis, Chaetaspis 

 stenochlaenae (nov. gen. Polystomellacearum), Pleiostomella phiHppinensis 

 (nov. gen. Polystomellacearum), Ellisiodothis microdisca, S y n p e 1 t i s loranthi 

 (nov. gen. Polystomellacearum), Melanoplaca dipteridis (nov. gen. Poly- 

 stomellacearum), Trubutiella congregata, Phragmocauma kolowratiae, Phyllachora 

 pterospermi. Ph. pycrel. Ph. imperatae. Ph. miscanthi. Ph. ophiuri, Telimena Bakeri, 

 Micropeltella makilingiana, M. paetensis, M. agusanensis, Micropeltis acalyphae, 

 M. evonymi, ]M. rhopaloides, M. samarensis, M. borneensis, M. similis, Dictyothjnriella 

 trewiae, D. heterosperma, Scolecopeltis Bakeri,. S. connari, Chaetoplaca 

 memecyli (nov. gen. Hemisphaeriacearum), Pycnocarpon parashoreae, Eremotheca 

 phiHppinensis, Eremothecella calamicola (nov. gen. Hemisphaeriacearum), 

 Pycnoderma circinans, Yates u la calami (nov. gen. Microthyriacearum), Pel- 

 tella conjuncta (nov. gen. Microthyriacearum), Microthyrium Ramosii, M. mischo- 

 carpi, Englerulaster atrides, Asterina cylindrophora, A. fallaciosa, A. saginata, A. 

 melanomera, A. platypoda, A. sphaeropoda, A. similliraa, A. breyniae, A. piperina, 

 A. ditissima, Parasterina Ramosii, Asteriuella creberrima, A. santiriae, A. saginata, 

 Lembosia microcarpa, L. pavettae TheiG. var. luzonensis, L. phiHppinensis, Morenoella 

 Bakeri, M. samarensis, M. linearis, M. fagraeae, Benguetia omphalodes (nov. 

 gen. Discomycetum), Calloriopsis gelatinosa (Ell. et Mart.) Syd. (nov. gen. 

 Bulgariacearum), RamosieUa calami (Rac.) Syd. (nov. gen. Agyriacearum), 

 Phyllosticta vallisneriae, Phomopsis cestri, Stenocarpella zeae (nof . gen. 

 Sphaeropsidearum), Botryogene visci (nov. gen. SpUaeropsidearum), Lepto- 

 stromella thysanolaenae, Discothociella Bakeri (nov. gen. Sphaeropsidearum), 

 Peltaster hedyotidis (nov. gen. Sphaeropsidearum), Monotospora parasitica, 

 Cercospora extremorum, Leucodochium pipturi (nov. gen. Tubercularia- 

 cearum). G. L i n d a u (Dahlem). 



Takamine, Jokichi. Enzymes of Aspergillus oryzae and the appli- 

 cation of its amyloclastic enzyme to the fermentation industry. 

 (The Chemical News, CX. Nr. 2866, p. 215—218, London 19U.) 



Der Pilz wird wegen seiner Enzyme in Japan zur Herstellung des ,,Sake", 

 der Soja-Briihe und des ,,Miso" allgemein verwendet. Auf Weizenkleie kultiviert 

 heiCen diese Kulturen „ T a k a - k o j i ", die auf Reis gezogenen „ K o j i ". Diese 

 Kulturen sind voneinander verschieden. Sehr eigenartig ist die Umwandlung der 

 Kteie in „Taka-koji": Sie geschieht in 48 Stunden, anstatt der 6—8 zur Herstellung 

 des Maizes erforderlichen Tage, denn diese Kulturen konnen als Ersatzmittel fiir 

 Malz benutzt werden. Die Umwandlung geschieht folgendermaQen: Behandlung 

 der Weizenkleie mit Dampf behufs Sterilisieruug und Verleihung einer klebrigen 



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