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Präparation und Untersuchung. Für systematische Bestimmung 

 der Planktondiatomeen genügt eine Konservierung in 96 % Alkohol, die 

 auch für die meisten speziellen Untersuchungen guten Dienst leistet. Für 

 Untersuchungen über den Zellinhalt empfiehlt es sich aber doch, auch 

 andere Fixierungsflüssigkeiten zu verwenden. Sehr gut und einfach ist die 

 Konservierung in Gilsons Flüssigkeit: Pikrinsäure 2 g, Formol (40%) 40 ccm, 

 Chloroform 2 ccm, Seewasser (mit dem lebenden Plankton) 1000 ccm. Man 

 kann dann die doppelt konzentrierte Lösung vorrätig haben und während 

 der Konservierung bis zur oben angegebenen Zusammensetzung mit See- 

 wasser verdünnen. Zu empfehlen ist auch Pikrinsäure-Nigrosin (in See- 

 wasser!), wodurch der Zellinhalt auch gleichzeitig gefärbt wird. — Viele 

 Arten brauchen nur in Wasser untersucht zu werden; um den Zellinhalt 

 sichtbarer zu machen, kann man einen Tropfen Safraninlösung (in 50 °/ Al- 

 kohol) dem Uhrgläschen zufügen. Andere Arten haben feine Strukturen in 

 der Zellwand, die nur in trockenem Zustande oder in stark lichtbrechenden 

 Medien deutlich gemacht werden können. Das Material wird dann entweder 

 auf einem Filter mit destilliertem Wasser gut ausgewaschen; dann wird ein 

 Tropfen auf einem Deckgläschen eingetrocknet (am liebsten ohne Erhitzen) 

 und das Deckglas mit dem Residuum vorsichtig geglüht. Um einer Biegung 

 des Deckgläschens vorzubeugen, lege man es während des Glühens auf ein 

 Glimmerblättchen, das auf einem Platinblech ruht. Das Deckglas darf nicht 

 rot werden; das Material wird zuerst verkohlt, später wieder weiß; dann ist 

 die Operation fertig. Bei dieser Präparation bleiben die Zellen ganz und 

 die Kolonien in Zusammenhang; wenn man besonders die Struktur der 

 Schalen studieren will, kann es günstiger sein, das Material zuerst mit kon- 

 zentrierter Salpetersäure zu kochen, bis alles organische Material gelöst ist 

 und die einzelnen Membranteile der Zelle (Schale, Gürtelband, Zwischen- 

 bänder) auseinander gespalten sind. Man muß dann zuerst durch Aus- 

 waschen den Alkohol entfernt haben, da sonst leicht durch kleine Explosionen 

 bei der Bildung von Salpetersäure-Esther viel Material verloren geht. Nach 

 dem Kochen wird die Säure mit Wasser verdünnt und die Diatomeen- 

 schalen auf einem Filtrum aufgesammelt und mit destilliertem Wasser aus- 

 gewaschen, endlich wird ein Tropfen mit einer passenden Menge von Ma- 

 terial auf einem Deckgläschen eingetrocknet und wenn nötig geglüht. Um 

 aus Bodenschlick oder anderem Rohmaterial die Diatomeenschalen auszu- 

 präparieren, genügt das Kochen mit Salpetersäure kaum; die dazu ge- 

 brauchten Methoden sind in den Handbüchern der Diatomisten angegeben 



Die geglühten oder mit Säure gekochten Diatomeen können entweder 

 trocken (in Luft) oder in Styraxbalsam oder Monobromnaphtalin untersucht 

 werden; für sehr zarte Formen sind Trockenpräparate vorzuziehen, während 

 dickwandige Formen mit kräftiger Struktur in Styrax besser beobachtet 

 werden. 



