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tagen 7 — 24 Stunden anhalten. Fajardo konnte bei Zimmertempe- 

 ratur lebende Amöben in einem frischen Präparat aus einem Leber- 

 abscess noch nach 30 Stunden constatiren. Durch zeitweises gelindes 

 Erwärmen des Objectträgers wird die bereits erloschene Beweglich- 

 keit wieder in Thätigkeit versetzt. Dies kann mehrere Male hinter- 

 einander geschehen. Interessant ist auch dieser Vorgang. Wenn man 

 den Objectträger mit beweglichen Amöben schnell durch eine Flamme 

 hin und herbewegt, so erkennt man, wie die Amöben sich abgerundet 

 haben, um alsbald wieder in die amöboide Bewegung zu gerathen. 

 Zur dauernden Beobachtung eignet sich am meisten der Thermostat. 

 Er birgt den Vortheil lebendigerer Beweglichkeit der Parasiten. Auf 

 diese Weise ist es auch möglich, sie länger vor dem Absterben zu 

 bewahren; aber durchschnittlich nach 24 Stunden pflegt alles Leben 

 erloschen zu sein. 



Die zur Ruhe gekommene Amoeba coli degenerirt nach und 

 nach, indem sie entweder homogen, fettähnlich glänzend wird oder 

 körnig zerfällt. Mikroskopisch unter gewöhnlichem Deckglaspräparat 

 kann man sie nicht länger als zwei Tage auffinden. Wenn man einen 

 dysenterischen Stuhl erst am zweiten, dritten Tage untersucht, wird 

 man auf eine sichere Diagnose nicht mehr rechnen können. Anders 

 verhält es sich mit den encystirten Formen, welche im Allgemeinen 

 kleiner (10—12 ,u), von runder Gestalt und schärfer, zuweilen doppelt- 

 contourirt sind. Diese Dauerzellen sind länger widerstandsfähig. Noch 

 nach Verlauf von drei Wochen hat man diese unter dem Deckglas be- 

 obachtet. Quincke, welcher den Stuhl länger aufbewahrte, konnte 

 sie nach einem Monat nicht mehr wahrnehmen. 



Aehnlich gestaltet sich die mikroskopische Untersuchung des 

 Eiters dysenterischer Leber-, Lungenabscesse etc. Ein Tröpfchen 

 des Eiters wird frisch auf das Deckglas gebracht. Ein geübtes Auge 

 vermag die beweglichen Amöben unter den Leukocyten deuthch zu 

 unterscheiden; auch in den Abscesswandungen sind sie nachgewiesen. 

 Der Sicherheit halber sind auch hier stets mehrere Präparate anzu- 

 fertigen, da nicht jeder Tropfen Eiter Amöben in sich schliesst. 



Zum Nachweis der Amöben im Gewebe, in Darmschnitten 

 eignen sich verschiedene Farbstoffe. Methylenblau-, Gentianaviolett-, 

 Hämatoxylinlösung, Eosin etc. Eine specifisches tintorielles Verfahren 

 giebt es nicht. In den Schnitten erscheinen die Amöben meist rund- 

 lich oder oval. Fajardo machte die Schnitte mit dem Schanz'schen 

 Microtom, nachdem die Stückchen in Alkohol absolutus oder Chloro- 

 formbehandlung in Paraffin eingebettet waren. Er färbte mit saurer 

 Häematoxylinlösung. Councilmann und Lafleur härteten die Ge- 



