374 Vitalfärbung. 



1. Untersuchung der lebenden Protozoen. 



Die meisten Protozoen sind ohne Schwierigkeit lebend unter das 

 Mikroskop zu bringen. Am ratsamsten ist es, die Tiere in der Flüssig- 

 keit, in welcher man sie findet, auf den Objektträger zu übertragen, 

 also z. B. Süßwasserprotozoen in Süßwasser, Meeresbewohner in 

 Meereswasser, Darmamöben im Darmschleim, Blutparasiten im Blut etc. 

 Ist jedoch in den letzteren Fällen (z. B. bei Parasiten aus inneren 

 Organen von Tieren) nicht genügend solche Flüssigkeit vorhanden, 

 so kann man die Protozoen in einen Tropfen physiologischer 

 Kochsalzlösung (destilliertes Wasser 100, Kochsalz 0,75) bringen, 

 welche die meisten Parasiten ohne Schaden eine Zeitlang ertragen. 

 Bei einer Zimmertemperatur von 18 — 20 ° C bleiben freilebende Proto- 

 zoen und Parasiten aus Kaltblütern meist ziemlich lange am Leben, 

 wenn man das Eintrocknen auf dem Objektträger verhütet; dies kann 

 man erzielen, indem man das Deckglas ringsum mit "Wachs oder Vase- 

 line abschließt. Parasiten aus Tieren mit höherer Körpertemperatur 

 untersucht man auf dem heizbaren Objekttisch oder mit Hilfe der so- 

 genannten Nut tal sehen Kammer, einer Umhüllung, welche gestattet, 

 das ganze Mikroskop in konstante Temperatur zu bringen. Es emp- 

 fiehlt sich, das Deckgläschen vor dem Auflegen an den vier Ecken 

 mit kleinen Wachsfüßchen x ) zu unterstützen, man vermeidet dadurch 

 ein Zerdrücken der Protozoen und hat zudem die Möglichkeit, die 

 Tiere durch Abschmelzen der Wachsfüßchen (indem man die letzteren 

 mit einem heißen Draht berührt), festzulegen und zu pressen. Die 

 Methode kann von Vorteil sein, wenn man Kern und kontraktile 

 Vakuole am lebenden Tier aufsuchen will, da diese Bildungen nicht 

 selten am gepreßten Tier klar hervortreten. Will man aber diese 

 Methode nicht anwenden, so muß man jedenfalls eine dünne Borste 

 oder ein Haar zwischen Objektträger und Deckglas legen. Viel falsche 

 Diagnosen beim Vorkommen parasitischer Protozoen sind dadurch 

 verursacht, daß die Parasiten durch den Druck des Deckglases zer- 

 drückt werden und, da zerdrückte Protozoen sehr schnell zerfließen, 

 der Beobachtung entgehen. Um die Bewegungen der Protozoen zu 

 studieren, ist es von Vorteil, diese zu verlangsamen, ohne das Tier 

 zu pressen. Zu diesem Zwecke setzt man der Flüssigkeit, in welcher 

 man das Tier untersuchen will, etwas Kirschgummi, Traganthgummi, 

 Quittensamenschleim oder auch Semen Psyllii oder Alga Caragaheen 

 zu. Um besondere Phänomene zu beobachten, fügt man auch zur Kul- 

 turflüssigkeit Tusche, Anilinschwarz etc., so daß die Protozoenkörper 

 sich hell auf dunklem Grund abheben. 



Man untersucht lebende Protozoen am besten bei nicht zu grellem 

 Tageslicht, indem man den Kondensor des Mikroskops ausschaltet und 

 relativ enge Blenden anwendet: so erhält man ein gutes Strukturbild, 

 bei welchem man besonders die in der Lichtbrechung sich schwach 

 unterscheidenden feinen Strukturen gut studieren kann, z. B. Geißeln, 

 Cilien, undulierende Membranen etc. Es empfiehlt sich, solche Unter- 

 suchungen mit achromatischen Systemen zu machen. Für Unter- 



1) Die Wachsfüßchen stellt man entweder mit kleinen Wachskerzchen (Zünd- 

 fäden) her, welche man durch die Flamme zieht, ehe man mit ihrem Docht einen 

 Tropfen auf die Ecke des Deckgläschens bringt, oder mit Knetwachs, welches man 

 durch Kneten weich macht, worauf man kleine Klümpchen mit den Ecken des 

 Deckgläschens selbst aufnimmt. 



