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sieht und Kritik angewandt werden. Bei sorgfältiger Anwendung 

 ergibt die Giemsafärbung infolge der Durchsichtigkeit der roten, 

 blauen und purpurnen Farbtöne zum Studium feiner Zellstrukturen 

 außerordentlich geeignete Präparate. 



Die Feuchtbehandlung der Präparate erfolgt für Giemsafärbung 

 auf folgende Weise: Präparate werden aus 70-proz. Alkohol durch 

 50- und 35-proz. Alkohol in destilliertes Wasser gebracht, darauf in 

 Giemsalösung, welche durch Zusatz von Tropfen der bei Grübler- 

 Leipzig käuflichen Giemsalösung zu destilliertem Wasser hergestellt 

 wird (1 Tropfen Giemsalösung auf 1 cem Wasser). In dieser ver- 

 dünnten Lösung bleiben die Präparate l / 9 bis mehrere Stunden. Die 

 Ueberführung in Xylol erfolgt durch Aceton (Stufen : 1. reines Aceton, 

 in welchem die Differenzierung vor sich geht, 2. -/ 3 Aceton -f- l / s 

 Xylol, 3. 2 /s Xylol + V3 Aceton, 4. reines Xylol). Darauf erfolgt die 

 Einbettung in etwas eingedicktes Cedernholzöl, da in Kanadabalsam 

 die Giemsafärbung oft sehr bald ausbleicht, während sie sich in Zedern- 

 holzöl sehr gut hält. 



Sehr wichtig für die Erzielung guter Präparate ist eine sehr sorg- 

 fältige, unter dem Mikroskop kontrollierte Differenzierung der Fär- 

 bung; das gilt sowohl für Karmin- und Hämatox flinfärbungen, wie 

 für Eisenhämatoxylin, Giemsa- und andere Anilinfarben. Wenn man 

 verdünnte, schwache Differenzierungsmittel anwendet, kann man sehr 

 genau kontrollieren und die Differenzierung im gegebenen Moment 

 abbrechen, z. B. wenn gerade Chromosomen oder Centrosomen deut- 

 lich sichtbar werden. Man macht sich dadurch von Zufallsresultaten 

 unabhängig. 



Ein vorzügliches Hilfsmittel zum Differenzieren unter dem Mi- 

 kroskop ist die „Färbebrücke", welche auch zum progressiven Färben 

 gute Dienste tut. Sie besteht aus einem Objektträger, auf welchem 

 zwei prismatische Glasbälkchen angeschmolzen sind (Fig. 325). Ueber 

 letztere legt man das Deckgläschen, die Schicht mit den konservierten 

 Protozoen natürlich nach unten gekehrt. Um die Schicht möglichst 

 zu schonen und zu übersehen, legt man das Deckgläschen diagonal 

 über die Brücke (Fig. 325 c). Dann fügt man mit der Pipette Farb- 

 stoff oder Differenzierungsmittel unter das Deckglas, so daß der ganze 

 Zwischenraum angefüllt wird. Die Kontrolle kann dann mit dem 

 Mikroskop bei starken Vergrößerungen, ja selbst mit Oelimmersion 

 stattfinden. Im letzteren Fall klebt man das Deckglas an den zwei 

 Ecken auf der Brücke mit einem Tröpfchen Wachs fest. 



Anwendung solcher vorsichtiger Methoden wird die Protozoen- 

 forschung vor vielen Fehlern bewahren, wie sie in den letzten Jahren 

 rohe Methodik, vor allem bei mit ihr verbundenem Mangel an Kritik, 

 verschuldet hat. Ein vorsichtiger Protozoenforscher wird sich nie- 

 mals mit der Anwendung einer Methode begnügen, sondern wird vor 

 allem am Leben beobachten, verschiedene Fixierungs- und Färbungs- 

 methoden nebeneinander anwenden und womöglich weitere Hilfsmittel 

 heranziehen, um die Resultate nach allen Richtungen zu kontrollieren. 



Um gewisse Strukturen und Inhaltskörper von Protozoen zu 

 studieren, mag es sich bisweilen empfehlen, dieselben in Glyzerin zu 

 untersuchen. Zu diesem Zwecke bringe man die Objekte ebenfalls 

 niemals vom Wasser oder Alkohol (nach der Konservierung und Aus- 

 waschung) direkt in konzentriertes Glyzerin, sondern erst in eine 

 Verdünnung von solchem mit Wasser resp. Alkohol und lasse die 



