528 Der Protoplast. 



saure, spiilt mit Wasser ab, iibertragt auf 20 30 Minuten in 

 Russowsche Jodjodkaliumlosung (S. 526 ob.) und lafit die Schnitte 

 dann in 25/ Schwefelsaure Va Stunde bis einen Tag lang quellen. 

 Schliefilich wird innerhalb 5 Minuten gefarbt mit 25 %, mit Jod und 

 einem Tropfen Meyerscher Pyoktaninlosung in Wasser, im Verhaltnis 

 1 : 30, versetzter Schwefelsaure". Empfehlenswert ist auch 2stundige 

 Fixierung mit Pikrinschwefelsaure (nach Xernec 1 ): 100 Teile 

 kalt gesattigte wasserige Pikrinsaurelosung, 0.5 Eisessig, 0.5 Schwefel- 

 saure), Quellung in 25/ Schwefelsaure und Farbung mit Pyoktanin. 



Das Verfahreu von Schaarschmidt scheint nicht uachgepriift zu sein. 

 Die Schnitte des mit Alkohol geharteten Materials werden unter Deckglas mit 

 wenig Schwefels. (1 -\- 2 T. Wasser) versetzt (rnikroskopische Kontrolle!). Xaeh 

 gutern Auswaschen mit Wasser wird mit Ammoniak ueutralisiert und mit wass. 

 Eosin- oder mit alkohol. Safraninlb's. unter Deckglas gefarbt. Bei Eosinfarbungen 

 sollen die Membranen ungefarbt bleiben 2 ). Eosin wurde auch von Macfarlane*) 

 benutzt (1 2 std. Einwirkung von 25 % Schwefels., Auswaschen in Wasser, 



1 std. Einwirkung von konz. wass. Eosinlos. und schnelles Nachwaschen). Durch 



2 % Eisessig liifit sich die Farbung fixieren. Wenig in Aufuahme gekonimen sind 

 die Methoden, welche die Farbungen nachtraglich diff'erenzieren. A. Meyer er- 

 probte Hamatoxylin. Die mit Alkohol oder mit Osmiums, geharteten Schnitte 

 gelangen auf 1 Tag in Hamatoxylin (Delafield), werden einige Minuten in Salzs.- 

 Alkohol (0.5 Salzs., 100 Alkohol 60%) gebracht, nachher in Ammoniak-Alkohol 

 (10 Tropfen offiz. Ammoniak, 100.0 Alkohol 60%) ausgewaschen ; schliefilich folgt 

 nacheinander absol. Alkohol, Xylol, Kanadabalsam. Die Membrau soil zuweilen 

 farblos bleibeu, doch sind die Plasmodesmen oft uicht gleichmafiig gefarbt. 



Liegt nur mit Formalin (2 / ) fixiertes Material vor, dann versagen 

 nach B a lint 4 ) die bekannten Methoden; er wascht daher mit 90%, 

 dann mit 70 % Alkohol gut aus. farbt mit Saurefuchsin (20 g Saure- 

 fuchsin, 3 ccm Anilinol, 200 ccm dest. Wasser). Dann folgt Auswaschen 

 (15 Minuten) mit Pikrinsaure (1 T. gesattigte Losung in 96/ Alkohol 

 -f- 2 T. Wasser verdiiunt), schliefilich Passage mit 96 / Alkohol, Benzol- 

 Alkohol, Benzol (jede Fliissigkeit mit wenig Pikrinsaure versetzt) und 

 Einschliefien in Benzolbalsam. 



Es war bereits betont, dafi der Nachweis der Plasmodesmen bei 

 diinnwandigen Membranen nicht leicht ist. So gibt Kny (Lit. S. 440, .;) 



J ) B. Nrnec, Uber die karyokinetische Kernteilung in der VYurzelspitze von 

 Allium Cepa, Jahrb. f. wiss. Bot, 1899, XXXIII, S. .-314. 



-i J. Schaarschmidt, Kommuuikat. v. Protoplast, u. d. Vorkomm. inter- 

 zellul. Protoplasmas, Ztschr. wiss. Mikr., 1884, I, :-U)l. Mit Eosin farbeu sich 

 uur die Membranen der Bastfaseru von Carica Papaya. 



: J. M. Macfarlane, Contr. to the history of Dionaea muscipula, Coutr. 

 of. Bot. Labor, of Pennsylvania, 1892, 1, S. 7. 



1 S. Bdlint, Bot. mikrot. Not., Ztsclir. wiss. Mikr., 1910, XXVII, 243. 



1 



