Chitin. 609 



(van Wisselingh). Auch Jahn 1 ) fand bei Coraatricha und Stemonitis 

 kein Chitin. Bei den Saprolegnieen und Peronosporeen (s. auch S. 556) 

 fehlt Chitin; es wird durch Zellulose vertreten. Schon Pringsheim fand, 

 daft sich die Membranen von Apodya und Achlya in Kupferoxydammoniak 

 Ib'sen und von Chlorzinkjod blau gefarbt werden (Lit. S. .~>17. 3). Die 

 abweichenden Angaben, die iiber den Chitingehalt der Flechtenpilze 

 vorliegen (Escorabe, Miiller, Kohl, van Wisselingh), sind viel- 

 leicht in einem schwankenden Chitingehalt begriindet. Fiir die Muco- 

 rineen gibt van Wisselingh Chitin an, Mangin (Journ. Bot., 1899, 

 XIII, 209) hingegen Zellulose, Callose und Pektin, doch soil die Muco- 

 rineenzellulose widerstandsfahiger als die Zellulose der Phanerogamen 

 sein. Die vegetativen Hyphen fiihren (Mangin) innen Zellulose, aufien 

 Pektinsubstanzen in der Membran, die Sporangien haben aufterdem 

 Callose und die Zellulose fiihrt fast immer Kalkablagerungen. Werden 

 endogene Sporen mit Kalilauge und Salzsaure behandelt, dann zeigen 

 sie Callosereaktion. An den Zygosporen sind nach Vuillemin 2 ) durch 

 Jodschwefelsaure und durch Hamatoxylin deutlich fiinf Schichten zu 

 unterscheiden. 



Emmerling, Ruppel und Iwanoff traten auf Grand makro- 

 chemischer Befunde fUr einen Chitingehalt der Bakterienmembran ein. 

 Hingegen fanden kein Chitin van Wisselingh in Bacillus megaterium, 

 anthracoides, mesentericus, fluorescens, violaceus, pulcher, G-rabowski 3 ) 

 in B. luteus, tumescens, asterosporus, Wester in Staphylococcus aureus 

 und Colibakterien, Tunmann (Lit. S. 94, 2) in B. caucasicus (Kefir). Je- 

 doch hat Viehoever 4 ) bei B. probatus einwandfrei Chitin nachweisen 

 konnen. Der negative Befund anderer Autoren scheint an der Benutzung 

 einer zu schwachen Vergrb'fierung zu liegen. Es mufi ,,mindestens eine 

 2000fache Vergrb'fierung" zur Erkennung der Violettfarbung benutzt 

 werden. Zur Untersuchung sind ausgereifte Sporen zu nehmen, die 

 am widerstandsfahigsten und wohl auch am reichsten an Chitin sind. 



Die Membranen von Beggiatoa mirabilis Cohn (auch die Quer- 

 wande) reagieren nicht auf Zellulose oder Chitin. In konz. Kalilauge 

 auf 160 erwarmt, reagieren sie nicht mit Jod. Hingegen werden sie 

 von Rutheniumrot , Safranin und Methylenblau gefarbt (Pektinsub- 



1 ) E. Jahn, Zur Kenntuis des Schleiinpilzes Coinatricha obtusata, Schwen- 

 dener Festschr., 1899, S. 288. 



2 ) P. Vuillemin, Recherch. morph. etc. sur 1. membr. d. Zygosp., Ann. 

 myc., 1904, II, S. 483. 



3 ) L. Grrabowski, Dissertation, Marburg 1907, nach A. Meyer, Die Zelle 

 der Bakterien, Jena 1912, S. 177. 



4 ) A. Viehoever, tTber den Nachweis von Chitin bei Bakterien, Ber. 

 deutsch. bot. Ges., 1912, XXX, S. 443. 



Tunmann, Pflanzenmikrochemie. 39 



