342 Siebentes Eapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



Salicylsaure anstellen(l). BEHRENS(2) schlug vor, die charakteristischen 

 Spharite des schwerloslichen Yttriumlactates zum Milchsaurenachweis zu 

 bentitzen. Man schtittelt die angesauerte Probe mit Ather aus, dunstet 

 den Ather ab, neutralisiert den Rtickstand rait NH 3 und setzt etwas 

 Yttriumsalzlosung zu. VOURNASOS (3) fiihrt die Milchsaure mit Jod und 

 Kalilauge in Jodoform iiber und weist letzteres durch die Isonitrilbildung 

 mit Methylamin nach, wobei man nach CRONER(4) statt Methylamin 

 Anilin bentitzen kann, um das charakteristisch riechende Isocyanphenyl 

 zu erhalten. Sonst sind noch als Erkennungsproben angewendet die 

 Reduktion von Ammonmolybdat und Chromat(5); ferner die Spaltung 

 mit H 2 S0 4 unter Bildung von Acetaldehyd und der Nachweis des letzteren 

 durch die Farbenreaktionen mit Nitroprussidnatrium und Piperidin, mit 

 Guajacol oder mit Codein(6). Mit Alkali erhitzt gibt Milchsaure Glieder 

 der Essigsaurereihe und hohere ungesattigte FettsSuren (7). Wasserstoff- 

 peroxyd verwandelt Milchsaure vollstandig in Essigsaure (8). 



Die Isolierung der Milchsaure erfolgt gewohnlich aus dem Alkohol- 

 extrakt des Untersuchungsmateriales, indem man dieses eindunstet, sodann 

 nach vorherigem Ansauern mit Ather extrahiert, und die Herstellung des 

 Zinksalzes aus dem atherloslichen Anteil vornimmt. In wasseriger Losung 

 ist das Zinksalz der d-Saure linksdrehend, das Zinksalz der 1-Milchsaure 

 hingegen rechtsdrehend (9). Ferner hat man die Bildung von Acetaldehyd 

 bei der Oxydation von Milchsaure und die quantitative Bestimmung 

 des Aldehyds herangezogen(lO). Im Licht zerfaJlt bekanntlich Milchsaure 

 gleichfalls in Acetaldehyd und Kohlensaure, und auch Brenztraubensaure 

 ist unter den Spaltungsprodukten. In alien Fallen laBt sich Acetaldehyd 

 qualitativ leicht nachweisen, indem man als Reagens Filtrierpapierstreifen 

 beniitzt, die erst mit 10% Nitroprussidnatrium getrankt und dann mit 

 5% Piperazin befeuchtet wurden. Acetaldehyd gibt damit eine blau- 

 violette Farbung, die sonst nur noch mit Propionaldehyd erzielbar ist (11). 



Als Material der Milchsauregarung sind allgemein die vier garungs- 

 fahigen Hexosen: Glucose, Fructose, Mannose und Galactose anzusehen, 

 doch sind viele Falle bekannt, in denen auch Hexite, wie Mannit, ferner 

 Pentosen und Methylpentosen (Rhamnose) unter reichlicher Bildung von 

 MilchsSure umgesetzt werden. Es scheint, als ob noch verschiedenartige 

 Prozesse unter dem Begriffe der bacteriellen Milchsauregarung zusammen- 

 gefaBt wurden. 



Dafiir spricht auch der Umstand, dafi die Milchsauremikroben nicht 

 wahllos Glucose, Mannit und Pentosen verarbeiten, sondern z. B. Bac. 

 bulgaricus wohl Glucose und Galactose vergSrt, nicht aber Mannit (12). 



1) H. KUHL, Pharra. Ztg., 55, 120 (1909). 2) J. BEHRENS, zit. von 

 BEIJERINCK, Zentr. Bakt. II, g, 21 (1902). 3) A. CH. VOURNASOS, Ztsch. an- 

 gewandt. Chem., 75, 172 (1902). 4) W. CRONER u. CRONHEKM, Berlin, klin. 

 Woch.schr., 42, 1080 (1905). W. THOMAS, Ztsch. physiol. Chera., 50, 540 (1907). 

 5) C. REICHARD, Pharm. Zentr. Halle, 5J, 1 (1912). 6) R. 0. HERZOG, Lieb. 

 Ann., 351, 263 (1907). G. DEJTIGES, Bull. Soc. Chira. (4), 5, 647 (1909). 7) H. 

 S. RAPER, Journ. of Phvsiol., 32, 216 (1905). 8) EFFRONT, Compt. rend., 154, 

 1296 (1912). 9) Vgl. u. a. S. SUZUKI u. HART, Journ. Amer. Chem. Soc., j/, 

 1364 (1909). 10) 0. v. FURTH u. CHARNAS, Biochem. Ztsch., 26, 199 (1910). 

 E. JERUSALEM, Ebenda, 12, 361, 379 (1908). W. SOBOLEWA u. ZALESKI, Ztsch. 

 physiol. Chem., 69, 441 (1910). J. MONDSCHEIN, Biochem. Ztsch., 42, 91, 105 

 (1912). 11) D. GANASSINI, Boll. Chim. Farm., 48, 785 (1909); Giorn. Farm. 

 Chira., 6t, 540 (1912). 12) BERTRAND u. DUCHACEK, Compt. rend., 148, 1338 

 (1909); Biochem. Ztsch., 20, 100 (1909). 



