2. Die Polysaccharide der Inulingruppe. 459 



Der qualitative Nachweis von Inulin wird gewohnlich durch die Bil- 

 dung der Inulinspharite beim Einlegen der Schnitte in absoluten Alkohol 

 gefiihrt oder auch durch Einlegen in Glycerin nach KRAUS. Doch hat 

 TuNMANN(1) mit Recht auf die leicht moglichen Verwechslungen mit an- 

 deren Substanzen aufmerksam gemacht. Man kann auch die Probe mit 

 Resorcin-HCl nach SELIWANOFF gut verwenden, doch ist eine Vorbehand- 

 lung der Ausscheidungen mit Weinsaurealkohol und langere Hartung des 

 Inulins erforderlich. 



Die fruher allgemeine Auffassung der Inulinausscheidungen mit ihrem 

 radialstrahligen Bau, ihrer Schichtung und der ausgepragten optischen 

 Anisotropie als wahre Spharite ist erst in neuerer Zeit, besonders auf Grund 

 ihrer deuth'chen Quellbarkeit, von H. FISCHER in Frage gestellt worden 

 und es sind in der Tat manche Bedenken gegen die herkommliche Auf- 

 fassung geltend zu machen. Einmal scheint es, als ob die Substanz der 

 Inulinausscheidungen nicht einheitlich ware, sondern als ob, ahnlich wie bei 

 Starke, eine groBere Reihe nahe verwandter Anhydrierungsstufen kolloider 

 Kohlenhydrate vorhanden waren. Die Inulinkugeln nehmen an Wasserloslich- 

 keit allmahlich wahrend des Liegens in Alkohol ab und werden schlieBlich von 

 Wasser bei Zimmertemperatur nur sehr langsam gelost, wahrend das na- 

 tive Inulin in jedem Verhaltnis mit Wasser sofort in Losung gebracht werden 

 kann. Ferner hat FISCHER hervorgehoben, daB man in dem frisch bereiteten 

 Saft aus Dahlia- oder Helianthusknollen beobachten kann, wie sich Trii- 

 bungen und Ausscheidungen bilden, die auch in viel kaltem Wasser nicht 

 wieder loslich sind. Dies alles erinnert an die von MAQUENNE an Starke- 

 losungen beobachtete Retrogradation und man wird die dort gezogenen 

 Folgerungen auch auf das Jnulin iibertragen kb'nnen. Vielleicht sind auch 

 die von TANRET (2) durch fraktionierte Barytfallung aus Topinambur- 

 knollen erhaltenen Kohlenhydrate der Inulingruppe, Pseudinulin, Inulenin, 

 Helianthenin und Synanthrin nur solche Fraktionen von verschiedenen 

 Anhydrierungsprodukten des Inulins. 



GroBere Mengen von Inuhn gewann KILIANI (3) aus Dahliaknollen 

 im Herbst durch Zerreiben des Materials und Auskochen desselben unter 

 Zusatz von Calciumcarbonat. Das eingeengte Extrakt liefert durch Aus- 

 frieren Inuhnabscheidungen, die man durch nochmaliges Ausfrierenlassen 

 und Waschen mit Alkohol und Ather schheBlich rein erhalt. 



Das native Inulin ist in Wasser unbegrenzt loslich, in trockenem 

 Zustand sehr hygroskopisch. Die wasserige Losung reduziert ammoniakali- 

 sches Silbernitrat, jedoch nicht FEHLiNGsche Losung; sie gibt keine Jod- 

 reaktion und ist linksdrehend. Nach LESCOEUR und MORELL ist fur Topi- 

 nambur- Inulin [O]D = 36,57 (4). Die Bestimmung des Molekulargewichtes 

 des Inulins ist oft versucht worden, doch sind die von KILIANI, TANRET, 

 DULL, BROWN und MORRIS angenommenen Werte wohl alle zu klein und 

 die kryoskopische Methode hat hier ebenso wie die osmotische nur sehr 

 unsichere Werte ergeben (5). H. FISCHER schlieBt aus plasmolytischen 

 Beobachtungen an inulinhaltigen Zellen, daB das Molekulargewicht etwa 

 dem SOOfachen der Fructose entsprechen diirfte. Jedoch konnen dem Oben- 

 gesagten zufolge dies im besten Falle Mittelwerte sein, da Inulin wohl nur 



1) O. TUNMANN, Ber. Pharm. Ges., 20, 577 (1910). 2) C. TANRET, Compt. 

 rend., 116, 514; //;, 50 (1893). 3) H. KILIANI, Lieb. Ann., 250, 147 (1880). 

 4) LESCOEUR u. MORELL, Compt. rend., 87, 216 (1878); Bull. Soc. China., 32, 418 

 (1878). 5) TANRET, Ebenda (3), 9, 227. KILIANI, 1. c. G. DULL, Chem.-Ztg. 

 (1895), Nr. 9. BROWN u. MORRIS, Jahresber. Agrik.chem. (1889), p. 369. 



