496 Siebzehntes Eapitel: Der Kohlenhydratstoffwechsel bei phanerogamen Pflanzen. 



tTber die Reservestoffablagemngen bei Holoparasiten sind wir 

 durch HEINRICHER(I) fur Lathraea clandestina und Squamaria naher 

 unterrichtet. In dem grofizelligen Rindenparenchym der Lathraea 

 clandestina-Haustorien sind meist viele Starkekorner vorhanden, die sich 

 gewohnlich mit Jod rein blau farben, jedoch ofters auch einen rotlichen 

 Ton bei der Jodreaktion geben. In dem Tracheiden fiihrenden zentralen 

 Teil findet sich oft reichlich kleinkornige StSrke, die sich mit Jod rein rot 

 farbt. Lathraea Squamaria enthalt die erwhnte Rindenstarke nicht, wohl 

 aber die kleinkflrnige jodrotende Form. Bemerkenswert ist es, dafi eine ganze 

 Reihe von chlorophyllfreien und chlorophyllhaltigen saprophytischen Phanero- 

 gaiaen, wie unter den Orchideen Epipogon, Limodorum, Goodyera, Ma- 

 laxis u. a., ferner Gentianaceen, wie Sweertia, Cotylanthera (2) kleine 

 Starkekorner, die sich mit Jod rot farben, in reichlicher Menge enthalten. 

 tTber die Starkespeicherung im Rhizom von saprophytischen Erdorchideen, 

 Coralliorhiza, hat MAC DOUGAL(S) Mitteilungen gemacht, und der Starke- 

 gehalt des unterirdischen Stammes und anderer Teile der Neottia Nidus 

 wurde bereits durch DRUDE(4) festgestellt. Monotropa Hypopitys enthalt 

 nach Russow(5) jodrotende Starke. Nach W. MAGNUS (6) fiihren im 

 Wurzelsystem der Neottia selbst die von dem endotrophen Mycorrhiza- 

 pilz bewohnten Zellen der Rinde oft kleinkornige Starke. Neottia neigt 

 sehr stark zur vegetativen Vermehrung, so daB diese Starkevorrate eine 

 physiologische Notwendigkeit darstellen (7). Fur die Orobanchen und 

 verwandte Parasiten fehlen Angaben. 



Die Aufnahme der Kohlenhydrate durch alle diese parasitisch 

 und saprophytisch lebenden Pflanzen ist ein schwieriges experimentelles 

 Problem und erst in wenigen Punkten einigermaBen bestimmbar. In 

 neuerer Zeit ist die bereits durch FRANK (8) geaufierte Ansicht, daB die 

 mit endotropher Mycorrhiza ausgerusteten Saprophyten durch die Ver- 

 dauung der Pilzhyphen und Resorption der aus den zugrundegehenden 

 Teilen des Mycels gelieferten Kohlenstoffverbindungen mindestens einen 

 wesentlichen Teil ihres Kohlenstoffbedarfs decken, durch W. MAGNUS 

 und SniBATA(9) sehr wahrscheinlich gemacht worden. Doch sind wir 

 weit davon entfernt, einen einigermaBen befriedigenden Einblick in den 

 Chemismus dieser Vorgange zu besitzen, nachdem einstweilen vorziiglich 

 morphologische Methoden zur Untersuchung dieses Problems heran- 

 gezogen worden sind. Die ektotrophe Mycorrhiza scheint nach den 

 Untersuchungen von STAHL(IO) keine Bedeutung fur die Kohlenstoff- 

 gewinnung aus dem Humussubstrate zu besitzen, sondern vor allem 

 einen Ersatz fur die mangelhafte Wurzelhaarbildung darzustellen. 



1) HEINRICHER, Beitr. Biol. d. PfL, 7, 342 (1896). 2) FIGDOR, Ann. jard. 

 botan. Buitenzorg, 14, 224 (1896). 3) MAC DOUQAL, Contrib. New York. Botan. 

 Qard. (1899). Symbiose and Saprophytisrn, p. 520. 4) DRUDE, Biol. v. Monotropa 

 u. Neottia (1873). 5) Russow, Auskleidung d. Intercellularen. Sitz.ber- Dorpater 

 Naturf. Ges., 7, I (1884). DRUDES ,,Monotropin" ist wohl mit der jodrotenden Starke 

 identisch. 6) WERN. MAGNUS, Jahrb. wiss. Botan., jj, II (1900). 7) Vgl. 

 J. PEKLO, Flora, 96, 260 (1906). 8) A. B. FRANK, Ber. Botan. Ges.. g (1891). 

 9) SHIBATA, Jahrb. wiss. Botan., 37, 644 (1902). 10) STAKL, Ebenda, 34, 

 IV (1900). 



