786 Neunundzwanzigstes Kapitel : Sterinolipoide der Pflanzen. 



alkoholischem KOH verseift, sodann das Verseifungsgemisch in Ather 

 eingiefit und die Tdare Mischung mit Wasser bis zur Abscheidung der 

 Atherphase versetzt; im Ather hat man nun das Cholesterin: Leider ge- 

 winnt man auf diese Weise keine Einsicht ob ursprunglich Sterin-Fettsaure- 

 ester vorlagen oder nicht. Ein Verfahren zur Trennung der Ester fehlt noch. 



Man kann zur Reinigung der Praparate noch die Uberfuhrung in Chole- 

 sterinbezoylester beniitzen, Stoffe, welche als ,,flussige Krystalle" oder 

 anisotrope Fliissigkeiten sehr interessant sind [REINITZER (1)]. 



Die reinen Phytosterine sind in Wasser unlb'slich, loshch in heiCem 

 Alkohol, Ather, Petrolather, Chloroform. Durch langsames EingieBen der 

 Acetonlosung in Wasser stellten PORGES und NEUBAUER (2) eine haltbare, 

 nach volliger Entfernung des Acetons etwa 0,2% Cholesterin enthaltende 

 Emulsion dar, welche typisch das Verhalten von Suspensionskolloiden 

 zeigte, durch Sauren ausgeflockt wurde und irreversible Salzfallungen 

 gab. Doch erinnert Cholesterin durch seine Quellbarkeit in Wasser und 

 die hohe Capillaraktivitat der Emulsion [CZAPEK (3)] wieder an lyophile 

 Kolloide. Mit den Phosphatiden teilen die Cholesterinkorper auch die starke 

 Aufnahme von Sauerstoff aus der Luft, besonders bei Belichtung. Hierbei 

 erniedrigt sich der Schmelzpunkt, manche der zu erwahnenden Farbenreak- 

 tionen bleiben aus, und die Praparate farben sich gelb (4). LIFSCHUTZ (5) 

 wies nach, dafi es sich um die Bildung von Oxydationsprodukten handelt, 

 vielleicht eines zweiatomigen Alkohols, der durch Zinkstaub wieder in 

 Cholesterin zuriickzufuhren ist, ferner um eine Dicarbonsaure (Chollan- 

 saure). Beide Stoffe sollen im Wollfett natiirlich vorkommen, Oxycholesterine 

 auch in Blut und Knochenmark, nach UNNA (6) auch im Sekrete der Knauel- 

 driisen und Talgdriisen der menschliehen Haut, Man kann sie quantitativ 

 auf spektrornetrischem Wege bestimmen. Bei Pflanzen sind Oxyphyto- 

 sterine noch nicht. nachgewiesen. 



Die Cholesterine geben (mehr minder vollstandig) eine Reihe von 

 praktisch wichtigen Farbenreaktionen : 



1. Reaktion von SALKOWSKI-HESSE (7). Eine Losung von Phyto- 

 sterin in Chloroform wird mit dem gleichen Volum H 2 S0 4 (1,76 

 spez. Gew.) geschiittelt: blutrote Farbung. 



2. Cholestolprobe nach LIEBERMANN (8): Man versetzt eine (wenn auch 

 sehr verdunnte) Losung von Phytosterin in Essigsaureanhydrid 

 tropfenweise unter Running mit konz. reiner H 2 SO 4 : Violettfarbung, 

 die bald in ein sattes Griin iibergeht. Gegenwart von Wasser ist 

 zu vermeiden. Eine Anzahl phytosterinartiger Stoffe zeigt diese 

 typischen Farbungen nicht. 



1) F. REINITZER, Monatsh. f. Chem., p, '421. OBERMULLER, Ztsch. physiol. 

 Chem., /5, 42 (1890). E. SCHTTLZE, Ztsch. analyt. Chem., 17, 173 (1878). R. SCHENCK, 

 Ztsch. Elektrochem., u, 951 (1905). Ferner P. GATTBERT, Compt. rend., 145, 722 

 (1907); 149, 608 (1909); 156, 149 (1913), fur die flussigen Krystalle anderer Chole- 

 sterine. Schraubige Einrollungen bei Cholesterin: GAUBERT, Chem. Zentr. (1910), /, 

 1000- 2) O. PORGES u. E. NEUBAUER, Biochem. Ztsch., 7, 152 (1907); Wien. 

 klin. Woch.schr. (1907), p. 1285. 3) CZAPEK, Methode z. direkten Oberflachen- 

 spannungsbestimm. d. Plasmahaut (Jena 1911), p. 67. Vgl. auch S. LOEWE, Biochem. 

 Ztsch., 42, 207 (1912). 4) SCHULZE u. WINTERSTEIN, Ztsch. physiol. Chem., 43, 

 316 (1904); 48, 546 (1906). 5) J. LIFSCHUTZ, Ebenda, 50, 436 (1907); 5*. 175 

 (1908); Biochem. Ztsch., 48, 373 (1913). 8) UNNA u. GOLODETZ, Biochem. Ztsch., 

 20, 496 (1909). SCHREIBER u. LEHARD, Ebenda, 49, 458 (1913). 7) E. SAL- 

 KOWSKI, Pfliig. Arch., 6, 207 (1872). O. HESSE, Lieb. Ann., 211, 273 (1878). 

 8) C. LIEBERMANN, Ber. Chem. Ges., 18, 1803 (1885). BURCHARD, Diss. (Rostock 

 1889). 



