1. Allgemeines. 805 



Carotin und Xanthophyll durch die Tracht der Krystalle, die Schnelligkeit des 

 Eintrittes der H 2 S0 4 -Reaktion u. a. Reaktionen, genugend scharf neben- 

 einander nachweisen. Ferner ist Carotin selbst in diinner Schicht rot gefarbt, 

 Xanthophyll jedoch gelb. Der Schmelzpunkt liegt bei Carotin bei 167,5 bis 

 168, bei Xanthophyll bei 172. Carotin ist ferner im Gegensatze zu Xantho- 

 phyll sehr loslich in niedrig siedendem Petrolather und kaltem CS 2 , sehr 

 wenig loslich in kaltem Alkohol und Aceton; im letzteren lost sich Xantho- 

 phyll leicht. Beide Stoffe kennzeichnen sich durch die Bildung von Di- 

 Jodadditionsprodukte als ungesattigte Verbindungen mit einer Doppel- 

 bindung. Optisch aktiv ist keiner von beiden; von den Farbenreaktionen 

 der Sterine geh'ngt keine einzige. An der Luft sind beide Pigmente stark 

 autoxydabel; die Gewichtszunahme durch Sauerstoffaufnahme kann 30 bis 

 40% betragen. Dabei bleicht die Farbe rasch aus. Auch dann ist nie eine 

 der Cholesterinreaktionen aufzufinden; friihere Angaben in positivem Sinne 

 erklaren sich durch die Beniitzung phytosterinhaltiger Praparate. 



Beide Farbstoffe losen sich in konzentrierter H 2 SO mit indigoblauer 

 Farbe. 



Xanthophyll enthalt nach seinen Reaktionen weder eine OH- noch 

 eine CO-Gruppe und ist keine Saure. Die alkohoh'schen Losungen beider 

 Stoffe zeigen ein Absorptionsspektrum, welches aus zwei breiten Bandern 

 im Indigoblau und einer Endabsorption besteht. Die Lage der Absorptions- 

 bander ist nach WILLSTATTER und MIEG: 



bei Carotin ....... I A 488-470 pp II 456-438^ 



Xanthophyll .... I A 480-470 II 453-437 (1). 



Bekannth'ch krystallisiert Mohrencarotin in den Parenchymzellen der 

 Wurzel spontan in stab- oder dreieckformigen verzogenen Bildungen aus. 

 ScHiMPEE(2) hat nachgewiesen, daB die Krystalle durch ihren Zusammen- 

 hang mit den Leukoplasten, in welchen sie ausgeschieden werden, abnorme 

 Formverhaltnisse (Zwangs- oder Hemmungsbildungen) erfahren. 



Kiinstlich kann man die Chromolipoide innerhalb der Zelle durch 

 verschiedene Methoden krystallisiert in situ nachweisen. Man hat dazu 

 beniitzt: Einwirkung verdiinnter Sauren (3), Einlegen in starke Kalilosung 

 in verdiinntem Alkohol (4), konzentrierte Resorcinlosung (5) usw. Sehr 

 einfach ist die Beniitzung verdiinnten Alkohols (30%), konzentrierter 

 Phenylurethanlosung oder anderer capillaraktiver Losungen passender 

 Konzentration (6). TAMMES (7) hat diese Methoden beniitzt, urn die all- 

 gemeine Verbreitung carotinartiger Farbstoffe im Pflanzenreiche zu illu- 

 strieren. Doch ist TSWETT (8) in seiner kritischen Wiirdigung der erwahnten 

 Methodik ganz im Recht, wenn er darauf aufmerksam macht, daB man 

 keinen Grund babe, von Carotinnachweis hierbei zu sprechen. Mikroskopisch 

 lassen sich, wie erwahnt, die einzelnen Chromoh'poide voneinander nach 

 VAN WISSELINGH durch die Krystallform und die Eintrittsgeschwindigkeit 

 der Blauung mit H 2 S0 4 unterscheiden. 



1) Vgl. auch MONTEVERDE, Acta Hort. Petropol., 13, 151 (1893). 2).ScHiMPER, 

 Jahrb. wise. Botan. (1885). A. GUILLIERMOND, Compt. rend., /55, 411 (1912). 

 3) TBCHIRCH, Untersuch. iiber d. Chlorophyll. (1884). B. FRANK, Botan. Zentr., 10 

 (1882). 4) MOOSCH, Ber. Botan. Ges., 14, 18 (1896).. 5) TSWETT, Botan. Zentr., 

 81, 83 (1900). 6) E. LIEBALDT, Ztsch. Botan. (1913), p. 65. Vgl. auch TUNMANN, 

 Pbarm. Ztg., 50, 1055 (1905). 7) TINE TAMMES, Flora, 87, 205, 244 (1900). - 

 8) TSWETT, Ber. Botan. Ges., 29, 630 (1911). 



