9. Chemische Reizerfolge auf die Form der Pflanze. 215 



verhindert die Zoosporenbildung; ebenso unterdriickt schwache Alkalescenz 

 des Mediums (0,05 % K 2 CO 3 ) die Zoosporenbildung, aber nicht das Wachs- 

 tum. Auf die Bildung der Geschlechtsorgane von Vaucheria (Lichtzutritt 

 1st hierbei in jedem Falle unerlaBlich) wirken Zuckerlosungen forderlich: 

 4 % Saccharose, 2 % Trauben-, Invert - oder Malzzucker, 1 % Mannit 

 oder Dulcit. Die Wirkung erlischt allmahlich bei steigender Konzentration, 

 so daB iiber 10 % Saccharose bereits wirkungslos ist. Inorganische Salze 

 verzogern die Bildung der Geschlechtsorgane und fordern das vegetative 

 Wachstum. 



tjber die Beeinflussung der Geschlechtsaste von Vaucheria durch die 

 Ernahrung hat DESROCHE (1) Angaben gemacht. Bei dem Studium der 

 Anderung von Zellform und Art der Teilung bei Stigeoclonium durch Mineral- 

 salze hat sich ein vorwiegender EinfluB der Kationen ergeben, wahrend die 

 Anionen keine besondere Wirkung haben (2). 



Hydrodictyon utriculatum erzeugt sicher Zoosporen, wenn es in 

 heller Beleuchtung in % l%iger Nahrlosung kultiviert und sodann in 

 Wasser versetzt wird. Zucker vermag hierbei die Lichtwirkung nicht all- 

 gemein zu ersetzen, doch wirkt Maltose stark auf die Zoosporenbildung. 

 Gametenbildung laBt sich bei Netzen mit schwacher Neigung zur Zoosporen- 

 bildung, wie es im Sommer bei Freilandexemplaren oder in grb'Beren Kultur- 

 gefaBen erzogenen Algen der Fall ist, durch hellen sonnigen Stand in relativ 

 wenig Wasser erreichen. Verdiinnte Rohrzuckerlosung fordert den ProzeB 

 stark, Spirogyra bringt man zur Conjugation, wenn man sie in 2 4%iger 

 Rohrzuckerlosung hell sonnig aufstellt. Nahrsalze hemmen die Conjugations- 

 neigung. Die Zygotenbildung laBt sich endlicb durch Herabsetzung der 

 Stickstoffversorgung herbeifuhren (3). Einwirkung von Ather, Chloralhydrat 

 veranlaBt bei Spirogyra abnorme Kernbildungen, aber keine Amitosen (4). 



Bei Oedogonium konnte KLEBS feststellen, daB die einmal erregte 

 Zoosporenbildung in Rohrzuckerlosung langer andauert als in Wasser. Die 

 geschlechtliche Vermehrung wird durch organische Salze gehemmt. Nach 

 FREUND (5) erhalt man Zoosporenbildung nach langerer Kultur in destil- 

 liertem Wasser durch Ubertragen in verdiinnte Nahrlosung, oder wenn nach 

 Aufenthalt in KNOPscher Losung NO 3 und P0 4 entzogen wird. 



Bei Ulothrix bewirkt 24 % Saccharose langeres Andauern der Zoo- 

 sporenbildung. Hormidium nitens zeigt bei Mangel an Nahrsalzen Faden- 

 zerfall; hierbei spielt Mangel an Kalk eine Rolle. Bei Conferva laBt sich die 

 Zoosporenbildung stark durch Maltose und noch mehr durch Inulin be- 

 fordern, wobei die Konzentration innerhalb weiter Grenzen keine Rolle 

 spielt; hierbei ist AusschluB des Lichtes erforderlich. Andere Zuckerarten 

 wirken nur beim Ubergang von Licht in Dunkel, und sind unwirksam bei 

 anhaltend verdunkelten Conferven, z. B. Trauben-, Frucht-, Rohrzucker, 

 Mannit u. a Gehemmt wird die Zoosporenbildung durch Glycerin, Glykogen, 

 Harnstoff, Glykokoll, Asparagin u. a. Stoffe. 



Bei Chlamydomonas lieB sich durch Mangel an Nahrsalzen sicher 

 Gametenbildung hervorrufen ; andererseits wird die geschlechtliche Vermeh- 

 rung schon durch 0,05 %ige Nahrsalzlosung gehemmt. EinfluB der Sauer- 

 stoffspannung soil nach KOLDERUP- ROSEN VINGE (6) die Keimungsrichtung 

 bei dem Fucaceenembryo bestimmen. Die Rhizoiden bilden sich auf der 



1) P. DESROCHE, Soc. Biol., 68, 998 (1910). 2) B. E. LIVINGSTON, Bull. 

 Torr. Bot. Cl., 32, 1 (1905). 3) W. BENECKE, Internat. Rev. Hydrobiol., / (1908). 

 - 4) C. VAN WISSELINGH, Beihefte bot. Zentr., 24, I, 133 (1908). 5) H. FREUND, 

 Flora, 98, 41 (1908). 6) L. KOLDERUP- ROSEN VINGE, Just (1888), /, 100. 



