2. Verarbeitung von Hexosen uud Pentosen. 315 



verarbeitet werden wie Glucose, aber Schleimsaure und Zuckersaure 

 nicht mehr. Die Alkoholbildung ist auf Gluconsaure geringer als auf Glucose. 

 Ubrigens heben auch HARDEN und WALPOLE hervor, daB die Alkoholbildung 

 auf Glucose von Mannitkulturen um das Doppelte iibertroffen wird, offenbar 

 weil die wirksame Gruppe CH 2 OH-CHOH im Mannit zweimal vorhanden 

 ist. Das Sorbosebacterium bildet nach CRISMER(I) Hexonsaure nur auf 

 Glucosenahrboden ; Ketosen, aucb Sorbose, werden verbraucht ohne Auf- 

 treten charakteristischer Produkte. Die synthetisch gewonnenen Hexosen 

 sind bisher fiir Bacterien nicht gepriift worden, die vorhandenen Ver- 

 suche (2) beziehen sich nur auf Hefen. Reichliche Zuckerzufuhr lenkt unter 

 alien Verhaltnissen den Stoffwechsel in andere Bahnen, als auf zucker- 

 armem Substrat, und verschiedene Erscheinungen, wie Riicktreten der 

 NH 3 -Bildung, Indolbildung usw., zeigen an, da8 die Spaltung von EiweiB- 

 korpern bei reichlicher Zuckerzufuhr sehr vermindert wird (3). Angeblich 

 soil auch Lecithindarreichung zur Zuckerverarbeitung bei Bact. coli in 

 gewissen Beziehungen stehen (4). Bact. coli spaltet nach EULER (5) Glucose- 

 Phos phors aureester . 



Bei der Darreichung von Pentosen und Methylpentosen (l-Arabinose, 

 l-Xylose und Rhamnose) konnte man zwar bei Aspergillus und verschiedenen 

 Heferassen (6) leichte Assimilierbarkeit, jedoch niemals unter Bildung von 

 Alkohol beobachten. Der Soorpilz verarbeitet wohl l-Xylose, nicht aber 

 Arabinose (7), wahrend eine von HANZAWA (8) untersuchte Rhizopus-Art 

 Xylose nicht ausniitzt. Fiir Bacterien wirken Pentosen allgemein als giinstige 

 Kohlenstoffnahrung, wahrend Glucoheptose und Quercit von SEGIN (9) als 

 unverwendbar gefunden wurden. Faulnisbacterien verarbeiten, wie SAL- 

 KOWSKi(IO), BENDix(11) und EBSTEIN(12) fanden, Pentosen sehr leicht; 

 dies ist fiir die Zersetzung der Nucleine, welche Pentosen enthalten, von 

 Wichtigkeit. Aber auch im Boden finden sich unter den Zersetzungs- 

 produkten der Pflanzen pentosenhaltige Materialien in den pentosanhaltigen 

 Zellmembranen, welche von Bodenbacterien gleichfalls verarbeitet werden. 

 STOKLASA(13) gab an, daB Xylose fur den-Alinitbacillus die beste Kohlen- 

 stoffnahrung sei. Nach FRANKLAND und MAC GREGOR(14) wird Arabinose 

 durch Bac. ethaceticus verarbeitet, GRIMBERT (15) fand Arabinose und 

 Xyloseverarbeitung beim FRiEDLANDERschen Bacillus; Bact. coli ist nach 

 CHANTEMESSE und ViDAL(16) und PERE (17) mit Arabinose und Rhamnose 

 ernahrbar; TATE(13) konstatierte fiir einen Mikroben von reifen Birnen 

 Verarbeitung von Rhamnose, HENNEBERG(19) Arabinoseernahrung bei Bact. 



1) L. CRISMER, Botan. Zentr., 104, 90(1905). Sorbose: TH. BOKORNY, Chem.- 

 Ztg., 34, 220 (1910). 2) E. FISCHER u. H. THIERFELDER, Ber. Chem. Ges. (1894), 

 p. 2031. 3) Vgl. A. J. KENDALL u. FARMER, Journ. of Biol. Chem., 12, 13, 19; 

 13, 63 (1912). BOHNKE, Arch. Hyg., 74, 81 (1911). 4) H. A. EPSTEIN u. OLSAN, 

 Journ. of Biol. Chem., //, 313 (1912). 5) H. EULER, Ztsch. physiol. Chem., 79, 

 375 (1912). 6) BOKORNY, Dinglere polytechn. Journ., joj, 115 (1897); Chem.-Ztg., 

 34, 220 (1910). SCHONE u. TOLLENS, Journ. f. Landwirtsch., 49, 29 (1901). CROSS 

 u. TOLLENB, Ebenda, 59, 419 (1911). 7) P. LINDNER, Wochschr. f. Brauerei, 28, 

 1 (1911). H. EULER u. MEYER, Ztsch. physiol. Chem., 80, 247 (1912). - 8) J. 

 HANZAWA, Mycol. Zentr., /, 76 (1912). 9) A. SEGIN, Zentr. Bakt., II, 12, 397 

 (1904). 10) E. SALKOWSEJ, Ztsch. physiol. Chem., jo, 478 (1900). - 11) BENDIX, 

 Ztsch. f. diat. u. physik. Therapie (1899), VII, j. 12) E. EBSTEIN, Ztsch. physiol. 

 Chem., 36, 478 (1902). 13) J. STOKLASA, Zentr. Bakt. II, 4, 817 (1898); 5, 351 

 (1899). 14) P. F. FRANKLAND u. J. MAC GREQOR, Journ. Chem. Soc. (1892) 

 p. 737. _ 15) L. GRIMBERT, C. r. Soc. Biol. (1896) p. 191; Ann. Inst. Pasteur, 9, 

 840 (1895). 16) CHANTEMESSE u. WIDAL, Koch Jahresber. (1892), p. 80. 17) A. 

 PERE, Ann. Inst. Pasteur (1898), p. 63. 18) G. TATE, Journ. Arner. Chem. Soc., 

 63, 1263; Chem. Zentr. (1893), 77, 1006. 19) W. HENNEBERO, Zentr. Bakt. (1898). p. 20. 



