322 Siebentes Kapitel: Die Resorption von Zucker u. Kohlenhydraten durch Pilze. 



kolbens auftretenden oligen Streifen und Tropfen, welche durch den wieder 

 kondensierten Alkohol entstehen, eine brauchbare Reaktion aiif Alkohol. 

 HANSEN und KLOCKER(I) fanden diese Probe sehr zweckentsprechend und 

 empfindlich; die Grenze des Nachweises geht bis zu 0,002 Volumprozent 

 herab; Aceton gibt die Probe gleichfalls, jedo<5h nicht Acetaldehyd und 

 Essigsaure. Gewohnlich beniitzt man zur Aufsuchung des Athylalkohols 

 in den ersten Teilen des Destillates die Jodoformprobe von LiEBEN(2): 

 Die Probe wird mit Jod und Na 2 C0 3 (Vermeidung von AlkaliiiberschuB!) 

 vorsichtig erwarmt, worauf eine schwefelgelbe Triibung durch das charak- 

 teristisch riechende, mikroskopische hexagonale Krystallchen bildende Jodo- 

 form CJ 3 H auftritt. Beim Schiitteln von alkoholhaltigen Losungen mit 

 Benzoylchlorid und Natronlauge entsteht der charakteristisch riechende 

 Benzoesaureathylester (3). Weitere Methoden zum Nachweise des Athyl- 

 alkohols beruhen auf der Oberfuhrung in Acetaldehyd durch Oxydations- 

 mittel und Erkennung des Aldehyds durch die Rosanilindisulfitprobe (4). 

 Farbenreaktionen auf Athylalkohol sind mehrfach empfohlen. Verdiinnte 

 Methylviolettlosung mit Alkalipolysulfid liefert bei Alkoholgegenwart eine 

 violettrote Farbung [v. BITTO (5)]. 50% HN0 3 auf 90% Alkohol geschichtet, 

 gibt einen griinen Farbenring (6). Farbenreaktionen treten bei Gegenwart 

 von Alkohol (aber auch von Oxysauren) ein mit alkalischer Diazobenzol- 

 sulfonsaure sowie mit Sulfanilsaure + NaN0 2 (7). Bei hoher Verdiinnung 

 findet sich fast der gesamte Alkohol im ersten Viertel des Destillates (8). 

 Gewohnlich bestimmt man den Alkohol des Destillates araometrisch, doch 

 kann man den Alkoholgehalt rasch und genau auch durch das Capillari- 

 meter bestimmen. Colorimetrische Methoden zur Alkoholbestimmung be- 

 ruhen z. B. auf der Fuchsindisulfitprobe nach vorheriger (Jberfuhrung in 

 Aldehyd (9), auf der Benutzung der Griinfarbung mit Chromat (10); andere 

 Methoden basieren auf derAthoxylbestimmung(11) oder auf der Oberf iihrung 

 in Essigsaure (12). 



Bekannt ist der hemmende EinfluB, welchen hohere Alkoholkonzen- 

 trationen der Garfliissigkeit auf den Fortgang der Garung entfalten. Be- 

 sonders hat sich Mucorhefe gegen Alkohol empfindlich gezeigt. Hier liegt 

 die Schadlichkeitsgrenze nach FITZ bei 3,54% Alkohol und die Garung 

 von Rhizopus nigricans sistiert schon bei 1,3% Alkohol (13). Hefe zeigt 

 nach KOCHMANN (1 4) bei 1 / 3M 1 / 500 Alkoholgehalt eine Forderung der Garung, 

 welche auf einer Begiinstigung der Fermentproduktion beruhen diirfte. 

 Bis zu 3% wird die Reproduktion der Hefe nicht behindert; 4,2% Alkohol 



1) A. HANSEN, C. r. Carlsberg, /, 175 (1881). A. KLOCKER, Ebenda, 10, 99 

 (1911). 2) LIEBEN, Ber. Chem. Ges., 2, 549 (1869). 3) BERTHELOT, Compt. 

 rend., 73, 496. PALLADIN, Ber. Botan. Ges. (1906), p. 276. 4) E. DE STOECKLIN, 

 Compt. rend., 750, 43 (1910). G. DENIGES, Bull. Soc. Chim. (4), 7, 951 (1910). 

 5) B. v. BiTTb, Chem.-Ztg., /;, 611. - - 6) J. K6SSA, Pharm. Zentr. Halle, 46, 893 

 (1905). 7) L. ROSENTHAIJER, Chem.-Ztg., 36, 830 (1912). 8) NICLOUX u. 

 BADDUER,-Bull. Soc. Chim. (3), 17, 424, 455 (1897). 9) ARGENSON, Ebeuda, 27, 

 1000 (1902). 10) H. AGULHON, Ebenda (4), g, 881 (1911). 11) STRITAR, 

 Ztsch. physiol. Chem., 50, 22 (1906). 12) BOURCART, Ztsch. analyt. Chem., 2g, 

 608 (1890). Sonst: R. GAUNT, Ztsch. analyt. Chem., 44, 106 (1905), kryoskopisch ; 

 LANDSBERG, Ztsch. physiol. Chem., 41, 506 (1904). KAPELLER, Ost.-ungar. Ztsch. 

 Zuckerindustr., 38, 817 (1909). HERZOG, Lieb. Ann., 351, 263 (1907). PRINGSHEIM, 

 Abderhaldens biochem. Arb.meth., 2, 1^(1909). A. BAUDREXEL, Ztsch. Spiritusindustr., 

 35, 379 (1912). Darstellung reinsten Athylalkohols: WINKLER, Ber. Chem. Ges., 38, 

 3612 (1905). 13) PASTEUR, Etudes sur la biere (1876), p. 133. BREFELD, Landw. 

 Jahrb., 5, 305 (1876). HANSEN, Med. Carlsberg Labor., 2, 160 (1888). LESAGE, Ann. 

 Sci. Nat. (7), j, 151 (1897). 14) M. KOCHMANN, Biochem. Ztsch., 16, 391 (1909). 



