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leur coloration bleu foncé sur les lissus nécrosés et les débris. Il ne 

 faut pas se fier uniquement à la présence d'un protoplasma vacuolaire, 

 car cette apparence peut résulter d'une altération cadavérique. Le noyau 

 doit présenter deux zones caractéristiques, l'extérieure irrégulière, bleu 

 violacé, l'intérieure rouge clair. 



Mouton 1 a obtenu les résultats suivants par coloration vitale : le rouge 

 de ruthénium (p. 723) colore vivement le karyosome en rouge et le 

 protoplasme en rose pâle; le bleu de méthylène colore bien le caryo- 

 some; de même pour le violet dahlia, mais celui-ci tue l'Amibe. 



Fixation en masse et coupes. — On peut laisser tomber 

 dans le fixateur des gouttes de mucus ou de pus, riches en Amibes. 

 Ces gouttes ne doivent pas être trop grosses, pour que le fixateur 

 pénètre facilement. On inclut dans la paraffine, on coupe et on 

 colore comme précédemment -. 



Le formol à 5 p. 100 conserve admirablement les Amibes et leurs kystes 

 avec l'aspect qu'ils présentent à l'état frais. Ce procédé est particulière- 

 ment indiqué pour le matériel destiné à l'enseignement : on dilue les 

 matières ou le mucus avec leur volume de solution formolée, puis on 

 décante l'excès de liquide. Les préparations, montées telles quelles entre 

 lame et lamelle, se conservent bien lorsqu'elles sont lutées au lut de 

 Krônig (p. 447). 



Enfin, lorsqu'on a de grandes quantités d'Amibes, on peut les fixer 

 et les colorer par centrifugation (p. 312 et o39). 



IIL — EXPÉRIMENTATION 



L'étude des lésions se fait d'après les mêmes méthodes. Les 

 fragments de rectum sont prélevés au niveau des ulcérations, 

 piqués sur des lames de liège paraffiné (p. 292) et fixés suivant les 

 méthodes habituelles. Le Duboscq-Brasil et le Bouin réussissent 

 très bien : on colore ensuite à l'héinaléine-éosine. Si on veut 

 colorer au Giemsa (méthode des coupes, p. il4), on fixera de 

 préférence au sublimé. 



On peut encore employer (de même que pour les frottis) la méthode 

 de Mallory et Wright : 



1. Fixer les pièces à l'alcool: 



2. Colorer 5 minutes par une solution a(iueuse saturée de thionine; 



L Ann. Inst. Pasteur, XVI, p. 480, 1902. 



2. Voir aussi la méthode de Hart {Journ. of trop, med., VI, p. 380, 1905), qui 

 colore directement les matières dans du glychémalun dilué, filtre sur gaze, vire 

 à l'eau et monte à la glycérine. 



