482 METHODES SPECIALES 



la méthode de Romanovsky exagère les détails de la structure nucléaire, 

 en rendant plus volumineuses toutes les parties chromatiques. Les gra- 

 nulations ultra-microscopiques renfermées dans le noyau sont considé- 

 rablement grossies et masquent toute la structure nucléaire. Ce phéno- 

 mène est dû, non à la dessiccation mais à la méthode de coloration : les 

 substances qui colorent la chromatine en rouge sont précipitées, non 

 seulement à Tintérieur de certains points, mais encore à leur périphérie, 

 ce qui augmente leurs dimensions et donne une idée fausse de leur 

 forme. Tout récemment, Swellengrebel i a tenté de réhabiliter la 

 méthode des frottis secs colorés au Giemsa, au moins en ce qui concerne 

 les Trypanosomes. 11 trouve que la différenciation du noyau et du 

 blépharoplaste, ainsi obtenue par lui, est meilleure que celle qui est 

 fournie par Thématoxyline ferrique de Heidenhain. 



.rajouterai que le procédé des frottis secs est parfaileinent suffi- 

 sant pour les ti^avaux courants et qu'il donne toujours de très 

 jolies préparations. 



Frottis humides. — Méthode de Romanovsky pour les 

 frottis humides. — Cette méthode est décrite p. 413. C'est une 

 des meilleures et des plus sures pour tes recherches cytologiques 

 sur les Trypanosomes. 



Méthode de Breinl et Moore -. — Etendre une couche très mince 

 d'albumine glycérinée sur une lame parfaitement propre ? pour cela, 

 prendre une goutte de la grosseur d'une forte tèle d'épingle et l'étaler 

 avec un linge propre. 



1. Sur cette couche, on étale la goutte de sang et on jette rapidement 

 le frottis encore humide dans le fixateur. Celui-ci sera de préférence 

 du Flemming fort. La fixation doit durer de 5 à 10 minutes; 



2. On lave ensuite à l'eau, puis : 



3. On passe par la série des alcools- en montant de 10 en 10 p. 100 

 jusqu'à l'alcool absolu; 



4. Revenir à l'alcool à 80". additionné d'iodure de potassium iodé. On 

 le prépare eu ajoutant une solution aqueuse concentrée d'iodure de 

 potassium et une solution alcoolique d"iode jusfju'à obtention d'une 

 teinte foncée. Laisser de o à 10 minutes dans ce li(iuide; 



5. Revenir a l'alcool à 30 p. 100. 



6. Coloration. — a) Safranine. — Employer la safraninc anilinée d<^ 

 Babès (p. 393). 



1. Colorer de 1/2 heure à 2 heures; 



2. Laver à l'eau; 



3. Colorer au bleu polychrome, ainsi préparé et vieilli à l'étuve : 



Bleu de méthylène pur de Hochst 1 gr- 



Carbonate de soude 3 — 



Eau distillée 100 — 



1. Swellengrebel. Fixation and Staining of Trypanosoma Lewisi. Parasitology^ 

 III, p. 226-238, 1910. 



2. Breinl et Moore, An», of trop. med. and parasitologij. I, j). 410, 1907-1908. 



