522 METHODES SPECIALES 



Causes d'erreur. — Voici quohiues sources de confusion qu'il suffit 

 de connaître pour ne pas se laisser tromper : 



1. Vacuoles el fentes des hématies. — Peuvent en imposer, mais n'ont 

 pas de contours nets, épais, ni l'aspect blanchâtre et opaque des vrais 

 parasites. Les fentes ont toujours une teinte rougeàtre et une réfrin- 

 gence particulière. 



2. Créneliires. — Peuvent faire hésiter lorsqu'elles apparaissent non à 

 la périphérie, mais à la surface du globule. En variant la mise au point, 

 on les voit devenir successivement brillantes et obscures. Ce sont donc 

 des élévations de la surface (fig. 93, p. 156) et non des corps inclus. 



3. Hématohlastes. — Peuvent être pris pour des parasites lorsqu'ils sont 

 superposés aux hématies. Mais ce sont des masses granuleuses diffuses, 

 n'ayant pas l'aspect opaque et le contour bien défini des véritables 

 parasites. 



4. Faux flagelles, qui se produisent au bout de ([uelque temps, aux 

 dépens des hématies du sang anémique, et se détachent pour flotter 

 dans le liquide de la préparation. Les vrais flagelles sont plus longs, 

 plus épais, mobiles, et naissent aux dépens d'un gamète pigmenté. 



5. Hématies repliées ou contournées simulant des gamètes en croissant, 

 mais ne possédant pas de pigment. 



2. Examen après coloration. 



Frottis desséchés. — ExéciUer les iVollis selon la méthode 

 indiquée p. 626. On peut essayer la méthode des frottis épais de 

 Ross (p. 628), on les modifications de Cropper ^ et de James-. La 

 fixation et la coloration se feront suivant une des nombreuses 

 variantes de la méthode de Ilomanovsky (p. i04). Parmi ces 

 procédés, ceux qui, à mon avis, donnent les meilleurs résultats 

 sont la méthode panoptique de Pappenheim (p. 405) et le pan- 

 chrome de Pappenheim (p. ili). 



Pour un diagnostic rapide, on peut employer soit le bleu boracique 

 de Manson (p. 391) ou la solution d'azur II de Giemsa (p. 389), après fixa- 

 tion par l'alcool, soit la méthode de Sabrazès (p. G25) (coloration vitale 

 parle bleu de méthylène à 1 p. 500). Il est encore plus simple d'exécuter 

 la méthode rapide de Giemsa (j). 410), qui donne en cinq minutes une 

 préparation définitive. 



Diagnostic du paludisme sur les frottis desséchés et 

 colorés au Romanovsky. — Ce n'est pas ici le lieu de décrire les 



1. Cropper, Rapid diagnosis of malaria, Brit. med. Joiuni., p. 891, 20 avril 191-2. 



2. South, med. Joitrn., III, oct. 1911. Analyse dans Bull. Inst. Pasteur, X, p. 877, 

 191-2. Déposer sur la lame une goutte suffisante pour faire un grand frottis (7 mm'; 

 mais ne pas étaler. Sécher. Dissoudre l'hémoglobine dans l'alcool chlorhydrique 

 (X gouttes pour 50 cm^). Laver à l'eau, sécher, colorer. 



