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aber gelingt es ha'ufig, diese groBeren Formen in Teich- 

 wasser mit Zusatz von HuhnereiweiB (weniger gut mit 

 Bouillonzusatz) zu reichlicher Vermehrung zu bringen. 



Man untersucht Amoben zunachst frisch im ha'ngen- 

 den Tropfen oder Deckglaspraparat, das mit Wachs- 

 fu'Bchen versehen und gegen das Verdunsten der Unter- 

 suchungsflussigkeit mit einem Wachs- oderVaselinerand 

 umrandet worden ist. Den Wachsrand stellt man sich 

 am besten in der Weise her, daB man mit einem kurz 

 vorher angebrannten, mit einem kurzen Docht ver- 

 sehenen Wachsstock rasch den Rand des Deckglas- 

 praparates entlang fahrt. Die amoboiden Bewegungen 

 kann man mechanisch durch einen Zusatz von Kirsch- 

 gummilosung verlangsamen. 



Von Kulturamoben stellt man hauptsachlich Ab- 

 klatschpraparate (vgl. S. 14) her. Bei manchen Arten 

 haften aber die Zysten dabei schlecht am Deckglaschen. 

 In solchen Fallen miissen Ausstrichpraparate ange- 

 fertigt werden. AuBerdem empfiehlt es sich dann 

 wie bei schlecht haftendem Material ganz allgemein! 

 auf 5060 erhitzte Fixierungsflussigkeiten anzuwen- 

 den. v. Wasielewski und seine Mitarbeiter schneiden 

 von Stellen der Kulturplatte, die einen zarten bakterien- 

 armen Amobenrasen aufweisen, kleine rechteckige 

 Agarsttickchen heraus, bringen sie in einen Hansen- 

 schen Schalenobjekttrager und bedecken sie vorsichtig, 

 ohne anzudriicken, mit einem sauberen Deckglas. Wenn 

 sich dann nach % 1 Stunde die meisten Amoben an 

 die Glasflache angelegt haben, wird die Fixierungs- 

 fliissigkeit in den Ring des Schalenobjekttragers so weit 

 getropft, daB sie das Deckglas nicht beriihrt, sondern 

 durch den Agar hindurch bis zur Amobenschicht dif- 

 fundiert (v. Wasielewski und Ktihn, Zool. Jahrb., 

 Bd. 38, 1914). 



Will man Teilungsstadien untersuchen, so ist das 

 Material vom Rande des Amobenrasens zu entnehmen. 



