Amoebosporidia. 67 



dannineine Losungvon Anilinblau(0,5 %) + Orange G l 

 (2,0%) und Oxalsaure (2,0%) gelost in destilliertem 

 Wasser (5 Minuten Farbedauer) rasches Abspiilen in 

 Wasser, gleich 96 % iger Alkohol, bald Ale. absolut., Xylol 

 und Kanadabalsam. Farbung manchesmal launenhaft. 



Materialbeschaff ung: In der Gallenblase des 

 Seepferdchens (Hippocampus guttulatus) findet sich 

 fast immer eine Myxosporidienart (Sphaeromyxa), in 

 der Harnblase des Hechtes ha'ufig Myxidium Lieber- 

 kiihni. Mikrosporidieninfektionen ha'ufig beim Stich- 

 ling (Gasterosteus), auch im Darm der Biene. 



Fur Infektionsversuche mit Myxosporidien wird das 

 Sporenmaterial in Filtrierpapier eingewickelt, mit 

 einer Schnur befestigt und einem Fisch zum Ver- 

 schlucken gegeben. (Vgl. auch die Ausfiihrungen von 

 Thelohan.) Fur Infektionsversuche mit Pebrine ge- 

 niigt es, das Sporenmaterial mit einem Pinsel an frische 

 Maulbeerblatter aufzutragen und diese nach dem Ab- 

 trocknen an junge Seidenraupen zu verfuttern. 



2. Sarkosporidia. 



Sarkosporidien werden im wesentlichen in gleicher 

 Weise untersucht wie Myxo- und Mikrosporidien. 



Die Untersuchung im Leben erfolgt am besten im 

 Gewebssaft, in physiologischer Kochsalzlosung, in 

 EiweiBlosung (EiweiB 20, 1 g Kochsalz, Aqua dest. 180) 

 oder im filtrierten menschlichen Speichel (evtl. heiz- 

 barer Objekttisch). 



Anzuf ertigen sind Schnittpraparate der inf izierten Mus- 

 keln sowie Ausstriche aus den Sarkosporidienschla'uchen. 

 Fixierung wie bei Myxo- und Mikrosporidien. Bei ver- 

 kalkten Muskelschlauchen is-t eine Konservierung mit 

 dem Gemisch von Perenyi angezeigt, das sonst nicht 

 besonders zu empfehlen ist (s. S. 36). 



