338 Blutausstriche. Massenmethode. 



dann in reines Xylol (eyentuell auch Nelkenol) gebracht, uni schlieE- 

 lich in Kanadabalsam eingebettet zu werden. Auch bei diesem Ver- 

 fahren unterlasse man nicht, das Deckgliischen zu unterstiitzen, in- 

 dein man entweder seine Ecken in der Flamme abschmilzt oder eiue 

 Borste von entsprechender Dicke unterlegt. 



Die lieute so viel benutzte Farbung mit Eiseiihainatoxylin 1st mit 

 grower Vorsicht und Kritik anzuwendeu. Sie macht zwar manche 

 Strukturen in anvergleichlicher Weise deutlich. Aber sie farbt alle 

 moglichen Zellbestaudteile in ahnlichen Farben wie die Kernbestand- 

 teile und verleitet daher zu ungerechtfertigten Homologisiernngen. 

 Aelmliches gilt fur Vergoldungs- und Versilberungsniethoden, welche 

 zum Teil ausgezeichuete Resultate liefern. 



Um gewisse Strukturen und Inhaltskorper von Protozoen zu 

 studieren, mag es sich bisweilen empfehlen, dieselben in Glyzerin zu 

 untersuchen. Zu diesem Zwecke bringe man die Objekte ebenfalls 

 niemals vorn Wasser oder Alkohol (nach der Konservierung und Aus- 

 wasclnmg) direkt in konzentriertes Glyzerin, sondern erst in eine 

 Verdiiunung von solchem mit Wasser resp. Alkohol und lasse die 

 Mischung sich durch Verdunstung allmahlich konzentrieren. Die unter 

 dem Deckglase entstehenden Liicken fiille man danu (nach einigen 

 Tagen) mit konzentriertem Glyzerin aus. 



Fur Blutparasiten liaben sich Methoden eingebiirgert, welche gute 

 Erfolge gezeitigt haben, obwohl sie ziemlich roll sind. Man fertigt 

 sogenannte Ausstrichpraparate von Spirochaten, Trypauosomen, Plas- 

 moclien, Babesien etc. und behandelt sie trocken nach den in der 

 Bakteriologie tiblichen Methoden. Es werden die Objekte, resp. das 

 sie enthaltende Blut oder die Kulturfliissigkeit in moglichst dimner 

 Schicht auf Blutdeckglaschen oder Objekttrager ausgestrichen, luft- 

 trocken gemacht, in 95-proz. oder absolutem Alkohol (15 30 Miuuten) 

 fixiert, dann wieder getrockuet und mit G i e m s a s , R o m a n o w s k y s . 

 May-Griinwalds oder ahnlichen Farbstoften gefiirbt. Nahere An- 

 gaben finden sich im spezielleu Teil in dem Abschnitt tiber Blut- 

 parasiten. 



So gute Bilder diese Methode auch gibt, wir sind dennoch nicht 

 berechtigt, die mit ihr erhaltenen Resultate olme weiteres mit den 

 nach den oben erwahnten erprobten Methoden erzielteu zu vergleichen. 



b) Massenmethode. 



Um in Mengen Material zu konservieren, wendet man die niim- 

 lichen Fliissigkeiten an, jedoch indem man protozoenhaltige Fliissig- 

 keit in einem Rohrcheu auffangt, auf 1 Teil derselbeu 2 Teile der 

 Kouservierungsfliissigkeit fiigt. sclitittelt, dann zentrifugiert, obeu 

 abgiefit und so mit alien aufeinanderfolgenden Fliissigkeiten verfiihrt. 

 Die Einwirkungsdauer ist dieselbe. Statt Xylol ist es jedoch daun 

 empfehlenswert, Nelkenol zu verweuden. 



Hat man keine Zeutrifuge zur Verfiigung, so wendet man das 

 Senkverfahren an. Man lafit in clem Reagenzrohrchen die Objekte 

 sich durch ihr eigenes Gewicht zu Boden senken, was mitunter mehrere 

 Stunden dauert; dann schiittet man sorgfaltig die jeweilige Fliissig- 

 keit ab, indem man an einem Glasstab dekantiert und gielSt das 

 michste Reagens auf. Man wende gewolmliche, nicht zu niedrige 

 Reagenzrohren an und fiille jedesmal bis etwa 2 / 3 der Hohe. Beim 

 Uebergang aus clem absoluten Alkohol in das reine Nelkenol modi- 



