ACTINOM YCOSE. Mo 



l.t's caraclères nior[)liolo;iiqiu's du i^omo Oosponi, aiif[iiel appartient, nous l'avons 

 dt^jà (lit, VActinomyces, ont été particuliéieineut bien étudiés par Salivaokau et Hadais, 

 surtout sur Oospora (Titignardt. Nous suivrons ces auteurs dans la description de ces 

 caractères, qui sont de nature à intéresser tous ceux qui s'occtipent de la physiologie 

 et de la culture de ces hyphomycètes. 



Si l'on étudie une parcelle de culture d'Oospora, colorée par la méthode de (iRAM, on 

 voit un grand nombre de lilaments ramifiés, enchevêtrés, fortement colorés, d'une lar- 

 geur de O^S^S environ. 



Les filanienls principaux se ramifient latéralement, d'une manière irrégulière, 

 tantAl nombreux et rapprochés, tantôt rares sur certains points. 



lis débutent sous forme de petits tubercules, qui s'allongent dans une direction 

 perpendiculaire à celle du iilament principal, leur largeur est la môme que celle de ce 

 dernier. 



Ils s'inclinent et se courbent ensuite, d'une façon variable, le plus souvent dans la 

 direction de croissance de la colonie, ils acquièrent une ramification plus ou moins 

 accentuée. Ces hyphes ne sont pas homogènes sur toute leur longueur. En certains 

 points les rameaux latéraux sont eu continuité directe avec le filament principal, en 

 d'autres, ils sont fragmentés, séparés par des intervalles qui ne se colorent pas par le 

 (iRAM. tantôt larges, tantôt étroits, donnant Tillusion d'une cloison. Selon les dimen- 

 sions qu'atteignent ces fragments, on peut les comparer à des Bacterium, des Bacillus, 

 des Coccus. Cette forme figure des granulations plus ou moins régulières, disposées assez 

 souvent en files régulières, surtout dans les parties âgées. 



Ces fragments sont souvent terminaux, mais parfois intercalés entre des portions 

 filamenteuses, à structure continue. 



La fragmentation n'est pas due au mode de préparation, car 'après la coloration au 

 Gram, sans dessèchement ni fixation préalable, le fait apparaître également. Comme 

 elle apparaît dans des cultures âgées de 2 jours; elle ne peut être attribuée à l'âge. 



La coloration directe avec la solution aqueuse de violet de gentiane, ou la coloration 

 après dessiccation et fixation, donne un aspect tout différent. 



Par le liquide Gram, on colore seulement le protoplasme des hyphes, tandis qu'avec 

 cette solution, on colore également la membrane. Aussi les filaments sont-ils plus larges 

 et continus. On ne voit plus de formes en bâtonnets ou en granulations isolées; si la 

 coloration est intense, les hyphes sont homogènes; si elle est faible, on aperçoit à leur 

 intérieur les mêmes bâtonnets de granulations, qui paraissaient libres, dans les prépa- 

 rations au liquide Gram. 



Fiéqueminent de vieilles cultures montrent, par la préparation au Gram, un grand 

 nombre de granulations irrégulières, disposées sans ordre, et paraissent complètement 

 indépendantes des filaments, tandis que les préparations, au violet de gentiane, des 

 mêmes cultures ne montrent que des filaments, sans granulations isolées. 



La fragmentation du contenu des hyphes s'explique facilement, par ce que l'un sait 

 des mycéliums des champignons de plus grandes dimensions. 



En règle générale, ces mycéliums présentent des lacunes ou vacuoles, surtout nom- 

 breuses dans les parties âgées, allongées souvent suivant l'un des filaments, et séparées 

 par des ménisques proloplasmiques, qui correspondent vraisemblablement aux granula- 

 tions des Oospora. 



Les fragments mycéliens, séparés du filament principal, sont capables d'accroisse- 

 ment. On ne sait ])as quelles sont les dimensions minima que doivent acquérir ces 

 fragments, pour être en état de s'accroître, mais assurément, ces dimensions peuvent 

 être des plus réduites. Cette propriété se retrouve d'ailleurs chez les Mucorinées, dont 

 le thalle n'est pas cloisonné, et dont chaque fragment est susceptible de s'accroître en 

 un thalle nouveau. 



Les hyphes ne semblent pas êlrc nmnis de cloisons transversales, soit (]u'on les 

 examine sur le vivant, soit qu'on observe les préparations. 



On peut faii'C disparaître le contenu protoplasmique, en laissant séjourner les fila- 

 ments entre deux lames de verre, pendant plusieurs heures, dans une solution de potasse 

 caustique à l p. 100, ou pendant vingt-quatre heures dans l'acide cliromique à 3 p. 100, 

 puis coloration par le violet de gentiane ou de fuchsine après lavage à l'eau. La double 



