Photosynthest 



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tung der Algen erfolgt. Die Eigenschaft 

 verschiedener Korper, sich bei Gegenwart 

 von Sauerstoff sichtbar zu verandern, ist 

 ebenfalls mehrfach zum Nachweis cier Kohlen- 

 saureassimilation verwandt worden. Be- 

 kanntlich leuchtet Phosphor in Anwesenheit 

 yon Sauerstoff auf. Bringt man ein Blatt 

 in ein verdunkeltes GlasgefaB, in dem sich 

 ein Stuck Phosphor befindet und belichtet, 

 nachdem zuvor der Sauerstoff vollig entfernt 

 ist, so leuchtet der Phosphor infolge der 

 0-Produktion durch die Pflanze (Boussin- 

 gault). In ahnlicher Weise kann zu dem- 

 selben Zweck IndigweiB verwendet werden. 

 Beijerinck, der diese Methode niit Erfolg 

 bei Algen benutzt hat (1890), schwemmte 

 die (einzelligen) Algen in einer bei Zimrner- 

 temperatur erstarrenden Gelatinelosung auf, 

 welcher neutrales indigschwefelsaures Natrium 

 zugesetzt war. Das letztere wurde durch 

 Zusatz von Natriumhydrosulfit (im Ueber- 

 schuB) zu IndigweiB reduziert. Bei Beleuch- 

 tung oxydiert der von den Algen gebildete 

 Sauerstoff das IndigweiB, was an der urn die 

 Algen herum auftretenden Blaufiirbung so- 

 fort erkennbar ist. - - SchlieBlich sei auf 

 eine dritte derartige Methode hingewiesen, 

 die von Hoppe-Seyler (1879) stammt. 

 Sie bedient sich des charakteristischen Unter- 

 schieds im Absorptionsspektrum zwischen 

 Hamoglobin und Oxyhamoglobin. In ein 

 mit Wasser nahezu gefiilltes Glasrohr wird 

 ein Helodeazweig gebracht und dem Wasser 

 etwas faulendes Blut zugesetzt. Das Glas- 

 rohr wird dann zugeschmolzen. Das zunachst 

 noch nachweisbare Spektrum des Oxyhamo- 

 globins schwindet im Dunkeln, sobald in- 

 folge der Atmung der Faulnisbakterien und 

 der Helodea aller Sauerstoff verbraucht ist. 

 Es zeigt sich jetzt im Spektrum der charakte- 

 ristische Absorptionsstreifen des Hamoglobins. 

 Als Indikator fiir die Assimilation der Pflanze 

 treten nach Beleuclitung alsbald die zwei 

 Absorptionsstreifen' des Oxyhamoglobins auf. 

 Auch sogenannte biologische Met ho den 

 sind zum Nachweis der 0-Produktion be- 

 nutzt worden. Einmal hat man sich der 

 bekannten Eigenschaft der Leuchtbakterien 

 bedient, nur bei Gegenwart freien Sauer- 

 stoffs zu leuchten. Beijerinck (1901) 

 impfte zu Reinkulturen von Griinalgen 

 (Chlorella) Leuchtbakterien und fand, daB 

 diese bei LuftabschluB nur dann leuchteten, 

 wenn die Algen assimilieren konnten. Einen 

 Beweis fiir die hohe Empfindlichkeit dieser 

 Reaktion erbrachte Molisch (1904), indem 

 er zeigt e, daB es geniigt, eine mit Leucht- 

 bakterien versetzte sauerstoffreie Algen- 

 kultur wahrend einer Sekunde aus 10 cm Ent- 

 fernung mit einem Streichholz zu beleuchten, 

 um die Bakterien zur Liehtproduktion zu 

 veranlassen. Die Assimilation ist unter diesen 

 Umstanden gewiB auBerst schwach, tiber- 



trifft aber doch den standig vor sich gehenden 

 inversen ProzeB der Atmung. 



Es ist das Verdienst von Engelmaun 

 I (1881), eine Methode ausgearbeitet zu haben, 

 j welche sich die Sauerstoffempfindlichkeit 

 jgewisser Bakterien zunutze macht und sich 

 fiir viele Zwecke als auBert brauchbar er- 

 wiesen hat (Bakterienmethode). Das 

 zu untersuchende Objekt (Algenfaden u. a.) 

 wird auf einem Objekttrager in eine 

 bakterienhaltige Fliissigkeit gebracht. Um 

 Luftzufuhr zu vermeiden, werden die Riinder 

 des Deckglases mit Vaseline abgedichtet. 

 Zuerst schwiirmen die Bakterien gleich- 

 maBig in dem Praparat timber . Schon 

 bald macht sich jedoch der Konzentrations- 

 unterschied im 0-Gehalt in der Umgebung 

 der assimilierenden Alge und den ubrigen 

 Teilen des Praparats geltend, wo der Sauer- 

 stoff von den Bakterien veratniet worden 

 ist, ohne neu ersetzt zu sein. Die Bakterien 

 sammeln sich in Schwarmen um die Alge 

 herum an (Aerot axis). Da ihre Bewegungs- 

 fahigkeit vom Vorhandensein von Sauerstoff 

 abhangt, sieht man nach einigerZeit nur noch 

 in der direkten Umgebung der Alge beweg- 

 liche Bakterien, in den ubrigen Teilen des 

 Praparats liegen sie bewegungslos. Wenn 

 das Praparat verdunkelt wird, so tritt dieser 

 Starrezustand auch in der Nahe der Alge 

 ein; bei Beleuclitung wird jedoch die Be- 

 wegungsfahigkeit sogleich wieder geweckt. 

 Mit dieser Methode lassen sich ebenfalls 

 auBerst geringe Spuren Sauerstoff nachweisen 

 (1 Hundertbillionstel mg), die weit entfernt 

 sind, mit den Hilfsmitteln der chemisclicn 

 Analyse bestimmbar zu sein. 



Um sich von der im Lichte vor sich gehen- 

 den Starkebildung in Laubblattern zu iiber- 

 zeugen, bedient man sich der Sachsschen 

 Jodprobe (1884). Nach etwa zweitagiger 

 Verdunkelung ist aus der Slattern nahezu 

 alle Starke in Form von Zucker nach dem 

 Stengel abgeleitet worden (vgl. Abscluiitt 5). 

 Beleuchtet man ein seiches Blatt zur Hiilfte, 

 wahrend die andere Halfte clunkel (mit 

 Stanniol bedeckt) bleibt, so liiBt sich im be- 

 lichteten Teil sehr bald Starke nachweisen. 

 Das Blatt wird znerst schnell in kochendent 

 Wasser abgetotet, danu in heiBen Alkohol 

 gelegt, bis der Chlorophyllfarbstoff extra- 

 hiert ist. Nach Abspiilen in Wasser gelangt 

 es dann in eine Jod-Jodkalitimlosung. Die 

 starkefreie Halfte erscheint gelblich, wahrend 

 die andere einen tiefdunkelbraunen Farbton 

 annimmt. Mit dem gleichen Erfolge laBt 

 sich das Experiment ausfuhren, wenn man 

 das Blatt nach der Alkoholbehandlung in 

 eine jodhaltige Losung von Chloralhydrat 

 legt. 



Handelt es sich um Blatter, welche keine 

 Starke bilden, sondern Zucker speichern 

 (Naheres s. Abscbnitt 5), so kann man 



