Photosynthese 



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neuerdings vielfach verbesserten Methoden 

 (Hempelsche Biiretten) bestimmt wird. 



Fig. 3. Apparat von Krogh zur Mikrogasanalyse. 

 Das in E aufgefangene Gas wird (lurch Zuriick- 

 drehen der Schraube S in das Kapillarrohr gesaugt 

 und dort das Volumen abgelesen. Parauf wird 

 das in E befindliche Wasser durch Kaliumpyrn- 

 gallatlosung ersetzt, das Gas nach E zuruckge- 

 bracht. Nach stattgefundener 0-Ab<orption wird 

 iin Kapillarrohr wiedenim das Volumen bestimmt. 

 \VtMin das Gas C0 2 -frei war, ergibt die Dit't'crcn/, 

 der Ablesungen den (J-Gehalt. Anderenfalls ist 

 in gleicher Weise vorher der C0,-Gehalt mit 

 Kalilauge zu bestimmen. Die das Kapillarrohr 

 umgebende lliille enthiilt Wasser zur Konstant- 

 haltung der Temperatnr. Xahere Beschreibiing 

 siehe in der Arbeit von Krogh. 



Naheres hieruber ist nachzusehen bei 

 Pfef f er, Pflanzenphysiologie I, 2. Aufl. 1897, 

 S. 292, fcrner in den zahlreichen Arbeiten 

 Fr. Blackmails und seiner Schule, wo 

 cinige sehr exakte Methoden angegeben sind. 



Hamlwnrtrrburh ilrr XaUirwissi'iisrhafk'n. Hand V 



Einen anderen Weg hat Sachs (1883) 

 eingeschlagen. Er bestimmte die Trocken- 

 gewichtszunafame, welche aus der Menge 

 der gespeicherten Starke und anderer Kohle- 

 hydrate resultiert. Er vert'uhr dabei so, dali 

 er aus der einen Hiilfte des Blattes vor, aus 

 der anderen nach dem Versucli genau gleich- 

 groBe Stiicke aussclinitt, diese trocknete und 

 wog. Die Gewichtsdjfferenz ist gleich der 

 Menge der angesammelten Assimilate. Es 

 ist notig, die Blatter vor dem Versm-h ab- 

 zutrennen, da sonst wegen der standig statt- 

 fiiulenden Ableitung der Kolilenhydrate nach 

 clem Stamm zu gcringe Werte gei'unden 

 werden wiirden. Die Sachssche Methode 

 ist neuerdings von Thoday (1910) finer 

 eingehenden kritischen Priil'ung unter- 

 zogen worden mit dem Ergebnis, daB sie 

 sich bei genauer Beachtung der Feliler- 

 qiiellen fur viele Zwecke als sehr geeignet 

 erweist. 



3. Assimilationsorgane. Spaltoffnungen. 

 Wenngleich alle chlorophyllhaltigen Teile 

 der Pflanzen zur Photosynthese befahigt 

 sind, so fehlt es iin Pflanzenreich doch 

 nicht an Organen, die fiir diese Funktion 

 ajanz besonders angepaBt sind. Bei den 

 Cyanophyceen und den griinen, braunen 

 oder roten Fadenalgen ist allerdings noch 

 kerne ausgesprochene Differenzierung in 

 diesem Sinne vorhanden, auch bei viden 

 anderen Algen nicht. Doch hat bereits 

 Caulerpa groBflachige, blattartige Urgane, 

 die zwcifellos starker assimilieren als die 

 Rhizome, denen sie aufsitzen. Dasselbe gilt 

 fiir die Rotalge Hydrolapathum sanguineum 

 u. a. Bei vielen Braunalgen (Aspero coccus, 

 Scytosiphon, Colpomenia und vielen anderen) 

 findcn sich an der Oberflache des Tlinlliis 

 Haarbildungen, die an Chromatophoren be- 

 sonders reich und ihrer Funktion ent- 

 sprechend von Reinlce Assimilatoren genaiint 

 worden sind. Ganz allgemein finden wir 

 bei alien holier organisierten Algen, welche 

 mehr oder weniger kompliziert gebaute Zell- 

 korper bilden, daB die aufieren Gewebe- 

 schichten als Assimilationsgewebe ausgebildet 

 sind. Die Zellen desselben unterscheiden 

 sich von den tiefer liegenclen durch Chro- 

 ma to pliorenreichtum, regelmaBigere, manch- 

 mal palisadenartige Form und dichte Lage- 

 rung (Fucus, Laniinaria, Desmarestia; Rho- 

 domela, Odonthalia usw.). 



Bei vielen thallosen Lebermoosen ist 

 ein ausgesprochenes Assimilationsgewebe an 

 der Oberseite des Thallus entwickelt. 

 (s. Fig. 4 und den Artikel ,, Moose"). 

 Bei andern Lebermoosen (Foliose Junger- 

 manniales) und bei den Laubmoosen ist 

 eine Gliederung in Stamm und Blatter vor- 

 handen. Polytrichuni hat ein Assimi- 

 lationsgewebe in Form von einschichtigen 

 Zellleisten, die auf der Blattoberflache 

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