Pflanzengallen und deren Erzeuger. 291 



corniculatus L., neu; alle werden ausführlich beschriehen; in den Beeren von Polygonatum 

 multiflorum fand Verf. Cecidomyidenlarveu, die jedoch zu Grunde gingen. 



20. Sknse (34) beschreibt Cecidomyidae , Sciaridae, Mycetophilidae von Australien 

 mit vielen neuen Arten und biologischen Beobachtungen. 



21. Nach Märten (19) erzeugt Asphondylia helianthi-globulus Stengelgallen an Heli- 

 anthus grosse-serratus; dieselben werden wie die Entwicklung des Thieres beschrieben. 



22. Asphondylia prunorum n. sp. $ $ Wachtl (37) Larven licht orangefarbig, erzeugt 

 die knospenförmigen Gallen an den Trieben des Schlehdornstrauches, Prunus spinosa, in 

 welchen auch die Verwandlung vor sich geht. 



23. Meade (20) beschreibt Diplosis fraxinella n. sp. (vielleicht Cecidomyia minuta 

 Winn.) als Inquilinen an den Eschengallen. 



Hemipterocecidien. 



24. LOW (17) giebt eine Liste der 119 bisher in Oesterreich-Ungarn , Bosnien und 

 der Herzegowina bekannt gewordenen Psylliden; bei jeder Art wird die Nährpflanze und die 

 geographische Verbreitung angegeben. Den schönen Aufsatz schliesst ein Verzeichnisa der 

 Nährpflanzen. 



25. Douglas (7) berichtet über die Stengelgallen von Mytilaspis pomorum an Calluna 

 und Erica; in Britannien finden sich folgende Arten dieser Gattung: M. abietis Schrk. an 

 Aesten von Balsamtannen; M. buxi Bebe, an der Blattunterseite von Buchs; M. conchiformis 

 Gmel. an Zweigeu von Ulmen; M. juglandis Fitch an Walnuss und M. linearis Geoffr. au 

 Linden. 



Acarocecidien. 



26. Westhoff (38) giebt eine sehr klare Uebersicht der Milbengallen, welche er mit 

 Thomas in 11 Gruppen theilt, doch weicht er in der Reihenfolge und Umgrenzung etwas 

 davon ab. Zahlreiche Figuren illustrireu den Artikel; überall sind die betreffenden Pflanzen- 

 arten namhaft gemacht. 



27. Schlechtendal (32) behandelt 

 1. Acarocecidien aus der Rheinprovinz. 



A. Ausser Phytoptus erzeugt auch Tarsonemus Cecidien ; ferner Tetranychus. Letztere 

 erzeugen Deformationen, welche auf unförmlicher Vergrösserung des Blattflächen- 

 wachsthums und dadurch bedingtes Ausstülpen bis Ausbauchen der Spreite bestehen, 

 welche bis zu einem Zusammenrollen oder Zusammenkrausen des Blattes führen 

 kann. Häufig tritt nun eine Veränderung der Blattform, ein Zurückbleiben in der 

 Entwicklung des Blattes auf, verbunden mit krankhaften Störungen des Nervenver- 

 laufes wie bei Phytoptus. Hierher gehören die unförmlichen Auftreibungen der 

 Blätter von Phaseolus vulgaris; dann bei Fraxinus excelsior, wo die Blattspreite 

 aufgetrieben und oberseits, besonders den Haupt-, weniger den Seitennerven ent- 

 lang, mit Wülsten besetzt ist; auch iu der Randnäbe und am Blattrande finden 

 sich solche. 



B. Phytoptocecidien. Acer campestre L. mit Cephaloneon myriadum, sparsamer Ceph. 

 solitarium; auch Erineum-Bildung. Alnus glutinosa Grt. mit Erineum alneum; 

 Alnus incana DC. mit Erineum alnigerum DC. und Nervenwinkelgallen; Bromus 

 mollis und arvensis L., Vergrünung der Blüthen unter Deformation des Aehrchens; 

 Carpinus Betulus L., Kräuselung der Blattnerven, Ausstülpung der Nervenwinkel; 

 Crataegus Oxyacantha L., Erineum Oxyacanthae; Fagus silvatica L., Erineum 

 nervisequim oft mit E. fagineum, oft an demselben Blatte feine Cecidien von Hormo- 

 myia und Phyllaphis Fagi, Blattrollungen nach einwärts, Knospenverderbniss durch 

 Phytoptus; Juglans regia L. mit Blattknötchen; Lonicera Periclymenum mit Blatt- 

 randfalten; Origanum vulgare L. mit Verfilzung der Blüthenstände; Populus alba 

 mit Blattdrüsengallen und frei lebenden Gallmücken ; Populus tremula mit Knospeu- 

 wucherungen, und Blattzahngalle; Prunus domestica mit Beutelgallen mit Mündungs- 

 wall (Cephaloneon hypoerateriforme Bremi); Pyrus communis L. mit Blattrand- 



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