258 Carl Günther: Schizomyceten. 



437. A. Neisser (360) theilt eine Modification der Fischl'schen Methode der An- 

 fertigung von Schnittpräparaten aus Reagensglasculturen mit. Er entfernt den Gelatine- 

 cylinder (nicht verflüssigende Arten sind nur zu brauchen) mittels Erwärmung aus dem 

 Glase und bringt ihn dann in 1 proc. Kaliumbichromatlösung (im Lichte stehend) auf 1 — 4—8 

 Tage. Dann tüchtige AuswässeruDg, Uebertragung in 70 proc, dann 96 proc. Alkohol. Dana 

 Zerschneiden in Stücke, Aufkleben mit Gummi auf Kork, Härtung in absolutem Alkohol, 

 Entfernung der äusseren harten Schale und Schneiden mit dem Mikrotom. Die Schnitte 

 werden dann auf dem Objectträger angetrocknet und gefärbt. Die Durchsichtigkeit, gleich- 

 massige Consistenz und Feinheit der Schnitte ist besser als bei der Methode von Fischl. 



438. E. Jacobi (259) giebt eine an die Neisser'sche Reagensglascultur- 

 härtungsmethode sich anlehnende Methode an, Plattenculturen (Gelatine) zu härten und 

 zu färben. Die Gelatine wird dünn aufgetragen. Nach der Entwicklung der Colonien wird 

 dann die Platte in 1 proc. Kaliumbichromatlösung gelegt, dann die Gelatineschicht herunter- 

 gezogen, ausgewässert, in Alkohol gehärtet, in kleine Stücke zerschnitten, gefärbt, mit Al- 

 kohol, Xylol behandelt und dann in Balsam eingeschlossen. 



439. J. Soyka und F. Kräl (480) haben Methoden ausgearbeitet, die eine Conser- 

 virung von Kartoffelculturen und von Plattenculturen gestatten. Zu ersteren 

 benutzen sie Glasdosen mit aufgeschliffenem Deckel; die Kartoffeln werden in Scheiben so 

 ausgestochen, dass sie in die Dose eben hineinpassen, dann sterilisirt, geimpft und zu 

 passender Zeit schliesslich vermittels des mit Paraffin aufgekitteten Deckels luft- und bac- 

 teriendicht eingeschlossen. lu ähnlicher Weise werden Plattenculturen in flachen, kreis- 

 runden, mit angeblasenem Halse versehenen Glasflaschen angelegt, deren mit Wattepfropf 

 versehene Oeffnung schliesslich ebenso mit Paraffin verschlossen wird. Das Wachsthum 

 steht in beiden Fällen bald still, und man erhält so nicht allein ud veränderliche Demon- 

 strationsobjecte, sondern conservirt sich auch das Material für lange Zeit zum Weiterimpfen. 



440. de Giaxa (201) empfiehlt zur ßeproduction der Koch'schen Plattenculturen 

 die Platte einfach auf ein lichtempfindliches (photographisches) Positivpapier zu legen und 

 dann im Sonnenlichte durchzucopiren. 



441. A. Neisser (361) giebt eine Beschreibung der von seinem Institutsdiener A. 

 Hein eingeführten Modificationen in der Bereitung der für bacteriologische Zwecke verwen- 

 deten Nährböden. Statt des Fleischwassers wird eine Lösung von Kemmerich's Fleisch- 

 pepton in Wasser verwendet, Agarlösungen werden mit Natr. phosphor. neutralisirt, die 

 Filtrationen werden unter Druck durch Watte bewerkstelligt. 



442. E. V. Freudenreich (184) giebt ein Verfahren zur Bereitung des Agar- 

 Agar-Nährbodens für Mikroorganismen an, bei welchem die Filtration im Autoclaven in 

 einer Atmosphäre von 110^ warmem (gespannten) Dampf vorgenommen wird. 



443. F. Hoppe (256) benutzt Eier in der Weise zu Culturzwecken, dass er das 

 Ei äusserlich desiiificirt, dann die Schale mit geglühtem Instrument durchlöchert, das Innere 

 inficirt, darauf die Oeffnung mit Collodium verschliesst. Durch die Bildung von Schwefel- 

 wasserstoff innerhalb des Eies wird aller freie Sauerstoff entfernt und die Bacterien wachsen 

 dann anaerobiotisch. 



444. J. Rosenthal und 0. Scholz (426) empfehlen Alkalialbumiuat als Nähr- 

 boden für Mikroorganismen. Dasselbe wird unter Anwendung sterilisirter Gefässe so be- 

 reitet, dass zunächst Hühnereiweiss durch Musseline gepresst und das blasenfreie klare 

 Filtrat dann mit sterilisirter Iproc. Natron- oder Kalilauge und mit sterilem destillirten 

 Wasser versetzt wird (5 vol. Eiweiss, 3 vol. Alkalilösung, 2 vol. Wasser). Die Mischung 

 wird in sterile Reagensgläser eingefüllt und bei 95—98° C. zu gleicher Zeit zum Gerinnen 

 gebracht und sterilisirt. Der so bereitete Nährboden ist durchsichtig und anstatt des Blut- 

 serums zu verwenden. 



445. M. A. Raskina (412) empfiehlt Milch zur Darstellung fester, durchsichtiger 

 Nährböden für pathogene Mikroorganismen. Unter anderem empfiehlt die Verfasserin Milch- 

 peptongelatine, Milclipeptonagar etc. 



446. van Enteren (408) giebt Methoden an, aus Milch in einfacher Weise Nähr- 

 böden für Mikroorganismen herzustellen. 



