(360 Reno Muschler und Kurt Krause: Schizouaycetes. [28 



108. Rosenthal, G. L'agglutinabilite du bacillogene du tetanos, 

 demier vertige de son parente avec le bacille du tetanos. (C. R. 

 Soc. Biol., 1907, p. 784.) 



Verf. weist nach, dass Tetanusbazillen, deren chemische, biologische und 

 pathogene Eigenschaften verlorengegangen sind, trotzdem durch antitetanisches 

 Serum agglutiniert werden. Reno Muschler. 



109. Knss, V. K. Ein Beitrag zur kulturellen Differenzierung 

 der Kapselbazillen. (Centrbl. Bakt., Orig. XLIV, 1907, p. 289.) 



Verf. unterscheidet vier Gruppen Kapselbazillen. 



1. Sklerombazillen lassen Laktose unverändert oder bilden Alkali, die 

 übrigen Säure. 



2. Ozaenabazillen spalten allein aus Erythrit Säure ab. 



3. Bacillus nerogenes und Bacillus ozaenae treten gegen Dulcit als Säure- 

 bildner auf. 



4. Bacillus Friedländer und Bacillus scleromatis sind gegen Dulcit als Alkali- 

 bildner anzusehen oder lassen ihn unverändert. 



Das Gärungsvermögen wechselt ebenfalls. 



Über Genaueres sei auf das Original verwiesen. Reno Muschler. 



110. Scheuer, L. Ein Beitrag zur Kenntnis von Streptococcus mucosus 

 capsulata* und zum Verhalten der Streptokokken auf Blutnährböden 

 (Centrbl. Bakt., Orig. XLI1I, 1907, Heft 4.) 



Der vom Verf. untersuchte Stamm von Streptococcus reagierte merk- 

 würdigerweise fast gar nicht auf die Gramsche Färbungsmethode. Der Strepto- 

 coccus mucosus vegetiert auf den Blutnährböden sowohl ohne Hämolyse als 

 auch mit solcher, sowie mit und ohne Bildung eines grünen Farbstoffes, wobei 

 es ganz gleichgültig ist, ob er für den Menschen pathogen oder nicht pathogen ist. 



Reno Muschler. 



111. Scliouten, S. L. Eine modifizierte Methode und ein neuer 

 Apparat für Enzymuntersuchung. (Arch. f. Bakt., 2, XVIII, 1907, p. 94 

 bis 96, mit 2 Fig. im Text.) 



Verf. empfiehlt folgende Modifikation der Methode von Fermi zur Unter- 

 suchung proteolytischer Enzyme vor: Man nimmt mit Thymol gesättigtes 

 Wasser und setzt 7 1 / 2 °/ Gelatine sowie soviel feingeriebenes Zinnober hinzu, 

 dass die Flüssigkeit intensiv rot wird. Während man durch Umrühren ver- 

 hindert, dass der Zinnober sich setzt, giesst man durch einen Trichter mit 

 langer Ausflussröhre von dieser Mischung in Reagenzgläschen, in jedes ca. 5 ccm. 

 Nachdem die Temperatur dieser Gläschen in einem Wasserbade auf ca. 40° 

 gebracht ist, hält man sie einzeln in schräger Richtung zehn Sekunden lang 

 unter die Wasserleitung, woran man irgend einen fächerförmigen Apparat be- 

 festigt hat, so dass der Strahl breit und dünn wird und zugleich die ganze 

 Gelatine umspült. Durch diese Bespülung wird die Gelatine nicht fest, aber 

 wohl dickflüssig. Wenn man dann das Gläschen senkrecht hinstellt, wird an 

 der Wand, über der Oberfläche der Gelatine, eine dünne Schicht, ungefähr von 

 der Form einer halben Ellipse zurückbleiben. Nach der Abkühlung kann man 

 dann in diese Gläschen weiter die Flüssigkeit giessen, die man untersuchen 

 will, unter Hinzufügung eines Stückchens Thymol. 



Erreicht wird durch dies Verfahren, dass das Enzym in Berührung kommt 

 mit einer möglichst grossen Oberfläche der Gelatine, die, weil sie in einer sehr 

 dünnen Schicht ausgebreitet ist, schnell aufgelöst werden kann. Man kann so 

 an der Schicht, die an der Innenwand sitzt, in kurzer Zeit sehen, ob ein Enzym 



