Allgemeines. 56 1 



dann mit Alkohol behandelt. Alsdann wird vorsichtig Wasser zugesetzt. Die weitere 

 Behandlung richtet sich dann darnach , ob man in wasserhaltige Medien oder in Harz- 

 lösungen einschliessen will. Für letztere Art giebt Verf. genau den Weg an. 



III. Die Einschlussmedien. Um die feineren Structurverhältnisse thunlichst 

 hervortreten zu lassen, handelt es sich bei ungefärbten Schnitten im Allgemeinen um 

 schwach lichtbrechende Substanzen; stark lichtbrechende sind meist nur bei Färbungen 

 angezeigt. Verf. geht die einzelnen bekanntesten Einschlussmedien durch und theilt die 

 von ihm gemachten Beobachtungen über ihre Brauchbarkeit mit. Zu Einschlussmedien von 

 hohem Lichtbrechungsvermögen zu greifen, hatte Verf. für pflanzenanatomische Zwecke bis 

 jetzt nur selten Veranlassung. 



IV. Ueber Färbungen. Als diffus und nebenher distinct färbenden Körper 

 empfiehlt Verf. das Bismarckbraun besonders für Objecte mit vollständiger oder nahezu 

 vollständiger Gewebedifferenzirung. 



Für die Färbung stark protoplasmahaltiger, kleinzelliger Gewebe hat sich Safranin 

 bewährt, das sich auch in Dammar-Xylollösung gut hält. Ebenso der Alauncarmin 

 und Boraxcarmin. Eingehenderes über die genaue Methode ersehe man aus dem 

 Original. 



15. Przewoski. Durchträukung mit Paraffin. — Centralbl. f. Allg. Pathologie u. 

 pathol. Anat., 1890, No. 26. Vgl. Bull. Soc. beige de Microsc, t. XLIII, 1891, p. 12—13; 

 J. R. Micr. S., 1892, p. 289. 



Statt der Entwässerung der Objecte für die Paraffineinbettung schlägt Verf. folgende 

 Methode vor: Aus gewöhnlichem Spiritus werden die Objecte auf wenigstens 24 Stunden in 

 Anilinöl gebracht. Dieses wird dann durch Chloroform (24 Stunden lang) entfernt. Darauf 

 kommen die Objecte in eine 40 proc. Lösung von Paraffin in Chloroform und am folgenden 

 Tage in geschmolzenes Paraffin, welches jedoch möglichst abgekühlt sein muss. 



Das Anilinöl kann vorher durch Destillation oder durch Hinzufügen eines Tropfens 

 Kali entwässert werden. 



16. Pringle, A. Paraffin infiltrating by exhaustion, — Journ. Pathol. and Bacteriol., 

 vol. I, 1892, p. 117-119. 



Nicht gesehen. 



17. Busse, Walther. Die Anwendung der Celloidiu-Einbettung in der Pflanzen- 

 anatomie. — Zeitschr. f. wiss. Mikrosk., Bd. VIII, 1892, p. 462—475. 



Da der Paraffineinbettung immerhin einige Mängel und Lücken anhaften, so schlägt 

 Verf. zu Einbettungszweckea das Celloidin vor. Die Objecte müssen völlig entwässert und 

 von Luft befreit sein. Aeheres Alkoholmaterial wird vorteilhaft noch zweimal je 24 Stunden 

 mit absolutem Alkohol behandelt, frische Pflanzentheile werden zur Entwässerung nach 

 und nach in 25-, 50-, 75- und 100 proc. Alkohol gebracht, auf je 24 Stunden. Sehr kleine 

 Objecte sind, wie Strasburger empfiehlt, vor der Einbettung mit wässeriger Hämatoxylin- 

 lösuug zu färben, damit ihre Lage im Celloidin später erkennbar sei; diese müssen natürlich 

 nach der P'ärbung noch entwässert werden. 



Nach der Behandlung mit Alkohol werden die Objecte mit einem Gemisch aus 

 gleichen Theilen absolutem Alkohol und wasserfreiem Aether 48 Stunden lang behandelt. 

 Dann kommen sie nach einander in folgende Celloidinlösung: 



No. I. Celloidin (völlig trocken) 10.0 : Aether-Alkohol 150.0 (für zwei bis drei Wochen). 

 No. II. „ „ „ 10.0 : „ 105.0 (mindestens drei Tage). 



No. III. „ „ „ 10.0 : „ 80.0. 



Die weitere Behandlung ist die bekannte (vgl. Ref. 14). 



Zur Befreiung der Mikrotomschnitte von Celloidin erweist sich die von Chauveaud 

 angegebene „Mikr oplyne" (vgl. Bot. J., XIX, 1891, 1. Abth., p. 562, Ref. 11) als sehr 

 praktisch. Nur hat Verf. das Platinnetz durch eine siebartige Durchbohrung des unten zu- 

 geschmolzenen Trichters ersetzt. Die auf die im Trichter befindliche Glaswolle gebrachten 

 Schnitte werden mit Aether-Alkohol von dem Celloidin befreit. 



18. Busse, W. Nachträgliche Notizen zur Celloidin-Einbettung. — Zeitschr. f. wiss. 

 Mikrosk., Bd. IX, 1892, p. 49—50. 



Botanischer Jahresbericht XX (1S92) 1. Abth. 36 



