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Tropfen Salzsäure enthält- Nachdem das säurehaltige Glycerin entfernt und durch reines 

 Glycerin ersetzt ist, ist das Präparat fertig, sobald die frühere diffuse Carminfärbung 

 sich auf die Zellkerne concentrirt hat, sonst aber verschwimden ist; manche Gewebetheile 

 bleiben gelb. 



8. Czokor. Cochenille-Carminlösung CNo. 9.) 



räth zur Färbung der Kerne u. s. w. eine Flüssigkeit zu verwenden, die man erhält, 

 wenn man 7 gr feiner, aus kleinen Thieren bestehende Cochenille mit ebensoviel gebrann- 

 tem Alaun verreibt, 700 gr destillirtes Wasser zusetzt, das Ganze auf 400 gr einkocht, eine 

 Spur Carbolsäure zusetzt und filtrirt. Die Lösung hält sich etwa ein halbes Jahr, nach 

 dieser Zeit muss sie wieder filtrirt und abermals mit einer Spur Carbolsäure versetzt werden. 

 Die Kerne werden damit bläulichviolett, die anderen Gewebe kirschroth bis dunkolroth. 

 Etwas abweichend verhält sich eine aus der „Blutcochenille" des Handels ebenso bereitete 

 Lösung. Die Präparate können in Harzen oder in Glycerin aufbewahrt werden., 



9. Flemming. Färbungsmethoden. (No. 14.) 



Für das feinere Studium der Kerntheilung zieht F. Anilin- und Hämatoxylinfärbungen 

 allem Andern vor und gerathen letztere nur dann recht schön, wenn sehr langsam mit 

 dünnen Lösungen gefärbt und öfters nachgesehen wird, um Ueberfärbungen zu vermeiden. 

 Bei Pflanzenzellen speciell werden jedoch Hämatoxylinfärbungen leicht so dunkel, dass sie 

 für feinere Studien schlecht brauchbar sind. Als Härtungsmittel leisten Chromsäure und 

 Pikrinsäure bei manchen pflanzlichen Geweben nicht so viel, wie bei Thiergeweben, während 

 Alkohol oft die Theilungsstadien sehr gut conservirt. Färbung mit Alauncarmin (vgl. No. 12) 

 ist hier sehr brauchbar. 



10. Johow. Nachweisang der Kerne und des Plasmas. (No. 29.) 



Der Verf. empfiehlt zur Nachweisung des Plasmas und der Kerne in alten Zellen 

 und Sekretbehältern weicherer Gewebe Maceration mit verdünnter Kalilauge mit nach- 

 folgender Anwendung alaunhaltiger verdünnter Hämatoxylinlösung, welche letztere auch auf 

 Zellen wirkt, welche durch Anwendung der Schultze'schen Mischung isolirt wurden. 



11. Russow. Tinctionsmethode mit Anilin. (No. 56.) 



Verf. lässt auf die Schnitte eine verdünnte wässrige Fuchsinlösung einige Minuten 

 einwirken, worauf nach Entfernung der überschüssigen Flüssigkeit ein Deckglas aufgelegt 

 und an dessen Rand ein Tropfen Glycerin gebracht wird. Das letstere zieht dann den 

 Farbstoff nur aus den verholzten und cutisirten Membranen nicht aus und halten sich die 

 Präparate vortrefflich. Ganz wie Rosanilin verhält sich auch Methylviolett, Anilinblau ist 

 weniger geeignet. 



12. Tangl. Tinction mit Älaancarmin nnd Blanholzdecoct. (No. 68 } 



Wenn man eine concentrirte Alaunlösung mit Carmin etwa 10 Minuten kocht und 

 nach dem Erkalten filtrirt, so erhält man eine Flüssigkeit, welche die meisten Cellulose- 

 membranen in 5— 10 Minuten intensiv roth färbt, während verkorkte, cutisirte und verholzte 

 Membranen ungefärbt bleiben. In Glycerin hält sich die Tinction sehr gut. Am besten 

 härtet man die betreffenden Pfianzentheile vorher in absolutem Alkohol. Manche Cellulose- 

 membranen, welche den Carminfarbstoff nicht auf die Dauer zu fixiren vermögen, speichern 

 dagegen ebenso , wie sehr zahlreiche Cambium- und ältere Parenchymzelleu den blauen 

 Farbstoff des mit etwas Eisenvitriol versetzten kalten wässrigen Blauholzdecocts auf. 



13. — Double-Staining of vegetable Tissues. (No. 85.) 



Ein Anonymus empfiehlt zur Doppelfärbuug Einlegen der Schnitte in eine schwache 

 neutrale Eosinlösung, Entfernen des überschüssigen Farbstoffes durch Auswaschen mit 

 Alkohol und schliessliches Einbringen der Schnitte in eine schwache neutrale Lösung von 

 Nicholsons-Blau. Auswaschen mit absolutem Alkohol fixirt die Färbung. 



14. Cornu und Wer. Absorption des matieres colorantes. (No. 7.) 



Die Verf. theilen eine Menge von Einzeluheiten über die Färbungen mit, welche 

 unverletzte und durchschnittene Pfianzentheile zeigen, wenn dieselben längere Zeit in 

 farbige Lösungen tauchen (vgl. Bot. Jahresber. 1878, S. 3). Besonders hervorzuheben ist 

 die Angabe, dass lebendes Plasma junger Zellen durch sehr verdünnte Lösungen von 

 Fuchsin u. s. w, gefärbt wird, während der Zellkern farblos bleibt (S. 5). Da jedoch diese 



