Morphologie, Anatomie, Physiologie und Biologie des Sporophyten. 335 



39. Neinec, B. Ueber das Centrosoma der thierischen Zellen nnd die homodynamen 

 Organe bei den Pflanzen. (Anat. Anz., XI Y, 18'J8, p. 569.) 



Untersucht wurden Zellen des Vegetationspunktes von Equisetum arvensc 



40. AnderSSOll. J. Zur Kenntnis* der Verbreitung des Rohrzuckers in den 

 Pflanzen. (Zeitschr. f. physiol. Chemie, XXIX, 423—428.) 



Rohrzucker wurde in einer Reihe von Farnrhizomen, z. B. von Asplenium filix- 

 femina, Struthiopteris germanica, Pteris aquüina, Polypodium vulgare, Aspidium filix mas, 

 A. spinulosum und in geringen Mengen ;iuch in A. angulare, gefunden. Bei A. marginale 

 konnte im Gegensatz zu Patterson kein Zucker nachgewiesen werden. 



Vgl. ferner Reich über Filixgerbsäure (Ref. 397). 



41. Saunders, C. F. Marsilia at night. (Fem Bull., VIII, 52.) 



Die Blätter von Marsilia, ausgenommen die im Wasser fluthenden Blätter, nehmen 

 während der Nacht die Schlaf Stellung an. Die Blättchen legen sich ganz genau anein- 

 ander, so dass ein zierlicher nickender Fächer an der Spitze des Stieles entsteht. 



42. Sandsten, E, P. The influence of gases and vapors upon the growth 

 of plants. (Minnesota Bot. Stud., 1898, II. Ser., P. I. 53—68.) 



Salvinia natans wuchs in einer mit Stickstoffoxydul gesättigten Lösung stärker. 

 Sie wurde getödtet in Ammoniakwasser 1 : 2000. 



42 a, Christ, H. Die Farnkräuter der Schweiz cf. Ref. 147. 



43. Heinricher, E. Nachträge zu meiner Studie über die Regenerationsfähig- 

 keit der Cystopteris-Arten. (Ber. D. B. G., XVIII, 109—121 m. 1 Taf.) 



Die mit dem Bulbillen von Cystopteris bulbifera Bernh. angestellten Versuche be- 

 zogen sich auf demEinfluss des Lichtes bei der Bildung der Regenerationsknospen 

 an den Niederblattschuppen. Sie ergaben, dass im Dunkeln die ganzen Bulbillen zu 

 treiben vermögen, und dass isolirte Niederblattschuppen ohne Licht Regenerations- 

 knospen erzeugen können. Eine Verlagerung der Anlage der Regenerationsknospen 

 dadurch, dass die Oberseite der Niederblätter zur Schattenseite gemacht und die Unter- 

 seite dem Lichte zugekehrt wird, ist nicht möglich; die Knospen kommen immer in 

 der Basalregion der Oberseite zur Anlage. Auch die Schwerkraft übt keinen Ein- 

 fluss auf den Ort der Entstehung der Regenerationsknospen; ob die Niederblätter mit 

 ihrer Oberseite nach oben oder nach unten sehen, die Regenerationsknospen kommen 

 immer an der Oberseite in der basalen Region zur Ausbildung. Sie werden in grösserer 

 Zahl entwickelt, wenn die Knospen bildende Oberseite dem Substrate zugewendet ist, 

 als wenn sie ihm abgekehrt ist (8:2), und auch ihre Anlage erfolgt in jenem Falle viel 

 rascher. Ausser den Flanken der Niederblattschuppen sind auch die medianen 

 Partien der Basalregion der Oberseite, wenn auch in geringerem Grade, zur Knospen- 

 bildung befähigt. 



Die Bildung von Regenerationsknospen trat an isolirten Basaltheilen der 

 Wedel von C. montana, C. fragilis und C. montana auf, hingegen nicht an jenen der 

 C bulbifera. Sie konnten sowohl auf Basaltheilen von Wedeln, deren Spreiten schon 

 abgestorben und abgeworfen waren, als auch an solchen, deren Spreiten entweder 

 voll entwickelt oder noch vollständig in der Knospenlage eingerollt waren, zur Aus- 

 bildung gelangen. An Basaltheilen junger Wedel mit noch eingerollter Spreite traten 

 auch dann Regenerationsknospen auf, wenn die Spreitenanlage im Zusammenhang mit 

 der Wedelbasis belassen wurde; die Spreite entfaltet sich zunächst, stirbt dann aber 

 bald ab, während der Basaltheil länger am Leben bleibt und ev. zur Knospenbildung 

 schreitet. Die Knospen kommen mehr oder minder in den untersten Parthien der 

 Wedelbasen, stets auf ihrer Oberseite, zur Entwicklung, Meist entstehen sie mehr den 

 Flanken genähert und vorwiegend entweder nur in Einzahl oder in Zweizahl, dann 

 auf jeder Flanke eine; doch ist die Zahl und der Ort der Knospen nicht streng be- 

 grenzt. Sie entstehen an den abgetrennten Grundstücken der Wedel oft schon nach 

 3 — 4 Wochen, oft erst nach Monaten; C. montana erzeugt sie meist rasch, bei C. alpina 

 erschienen die ersten nach 3 Monaten, die letzte am Beginne des 7. Monats. 



