166 ANNALES DE L'INSTITUT PASTEUR. 



tation directe. Cependant l'allure générale est la même chez 

 l'homme et chez les animaux '. 



Voici la méthode dont nous nous sommes servi dans nos 

 recherches. Nous piquons une petite veine superficielle de 

 l'oreille de l'animal en expérience. Le sang est étalé en couches 

 très minces sur des lamelles et fixé par la chaleur : les lamelles 

 sont déposées pendant une heure sur une plaque métallique 

 chauffée à 65°-70°. Les préparations ainsi ohtenues se conser- 

 vent très longtemps ; nous les examinons ultérieurement. Pour 

 les colorer, nous les mettons pendant o à 10 minutes dans un 

 mélange à parties ég-ales des deux liquides suivants : 



1. Eosine. 1 gramme. 



Alcool 2a — 



Eau "o — 



Glycérine 50 — 



2. Hémaloxyline ... 1 gramme. 



Alcool...' 10 — 



Alun 20 



Eau............. 200 — 



On dissout l'alun à chaud dans l'eau ; on filtre après refroi- 

 dissement. 24 heures après, la solution d'alun est ajoutée à la 

 solution alcoolique d'hématoxyline, et le mélange est filtré après 

 un repos de 8 jours (Bôhmer). 



La préparation lavée soigneusement à l'eau passe par l'alcool 

 à 90°, par l'alcool absolu, par l'essence de girofles, et est montée 

 dans le baume. Il est recommandable de n'étudier les prépara- 

 tions qu'après un ou deux jours. 



Dans ce réactif, l'hématoxyline se porte sur le noyau et 

 l'éosine sur les granulations protoplasmiques. 



Nous avons aussi coloré le sang par d'autres réactifs, princi- 

 palement par la solution d'orange G, fuchsine acide S et vert 

 de méthyle. Par ces méthodes nous obtenions des préparations 

 moins faciles à étudier et qui ne fournissaient du reste aucun 

 renseignement complémentaire. 



1. Clémence Kverard et Jean Demoor, Les molifications des globules blancs 

 ïlans les maladies infectieuses. Soc. des Se. médic. et nat. de Bruxelles, 1892. 



