Die Diatomeen der arktischen Meere. 537 



waren, die Chromatophoren aber undeutlich wurden, besonders in den vielkernigen Stadien, so daß ich 

 es nicht für ausgeschlossen hielt, daß sie resorbiert sein konnten. Darum war es mir sehr willkommen, 

 auf einer Fahrt mit dem Dampfer „Michael Sars" im Mai 1903 ein außerordentlich reiches Material 

 von Chaetoceras decipiens mit verschiedenen Stadien der Mikrosporenbildung zu erbeuten. Leider war an 

 den betreffenden Stationen die See zu bewegt, um die Untersuchung des lebenden Materials zu erlauben, 

 was namentlich darum sehr bedauernswert ist, weil es unmöglich wurde, das weitere Schicksal der ausge- 

 schlüpften Mikrosporen zu verfolgen. Das Material wurde aber sehr gut konserviert, teils in Alkohol, teils 

 in einer Flüssigkeit, die mir Professor G. Gilson für Plankton empfohlen hatte, und die sowohl mit Diatomeen 

 als auch mit Phaeocystis ausgezeichnete Resultate giebt ')■ Die Chromatophoren waren in dieser Lösung 

 mit Farbe und ihren Pyrenoiden vollständig konserviert, und die Zellkerne konnten mit Hämalaun leicht 

 nachgewiesen werden, sowohl an dem Alkoholmaterial als auch in den mit Gilson's Flüssigkeit kon- 

 servierten Zellen. 



Ueber den Verlauf des Teilungsprozesses genügt es, auf die Zeichnungen mit der Figurenerklärung 

 hinzuweisen. Chaetoceras decipiens hat eine kleinere Anzahl — gewöhnlich 6 — 10 — ziemlich großer, un- 

 regelmäßigeckiger, plattenförmiger Chromatophoren, die der Zellwand dicht anliegen. Jedes Chromatophor 

 hat in der Mitte ein Pyrenoid. Es geht deutlich aus den Zeichnungen hervor, daß die Chromatophoren 

 sich bei jeder Kernteilung teilen, so daß die ursprüngliche Anzahl der Chromatophoren in den Tochter- 

 zellen beibehalten bleibt, während die Chromatophoren selbst natürlich mit jeder Teilung kleiner werden. 

 Die Tochterzellen runden sich ferner nach jeder Teilung ab ; insofern stimmt Chaetoceras decipiens mit Ch. 

 boreale und Biddulphia mobiliensis überein, während Rhizosolenia styliformis sich anders verhält. Ich habe bis 

 32 Mikrosporen in einer Zelle gesehen ; die Zahl ist gewöhnlich ein Multiplum von 2, wie es der Fall sein 

 muß, wenn alle Tochterzellen sich gleichzeitig teilen. Es kommt aber auch vor, daß die Teilungen etwas 

 mehr unregelmäßig verlaufen, indem hier oder dort eine kleine Zelle in den Teilungen zurückbleibt. Die 

 Zellen von Ch. decipiens sind gewöhnlich so flach, daß die ersten Teilungen alle senkrecht auf die Apikai- 

 ebene verlaufen, so daß in breiter Gürtelansicht keine Tochterzelle von einer anderen überdeckt wird. Im 

 32-zelligen Stadium ist aber jedenfalls die Anordnung unregelmäßiger geworden. 



Die Tochterzellen haben während des Teilungsprozesses keine eigentliche Membran ; ganz dünne, 

 weiche Membranen scheinen mehrmals gebildet zu werden, aber schon bei der nächsten Teilung kann das 

 Protoplasma sich wieder davon zurückziehen, und diese Membranbildungen scheinen überhaupt nur vor- 

 läufiger Natur zu sein, ohne bestimmte Form und ohne wesentliche Bedeutung für das Leben der kleinen 

 Zellen, die wahrscheinlich in nacktem Zustande aus der Mutterzelle ausschlüpfen müssen. 



Das weitere Schicksal der Mikrosporen ist ganz unbekannt ; ich habe schon früher die verschiedenen 

 Möglichkeiten diskutiert (1902, p. 23 — 24); die Erscheinungen, die in dieser Verbindung George Murray 

 und jetzt auch Bergon erwähnt, sind nach meiner Ansicht ganz unrichtig gedeutet. Die Zellaggregate, 

 die Murray 1. c. t. 2, f. 4—5 abbildet, sind wahrscheinlich nur absterbende, von Gallerte umhüllte Massen 

 von Thalassiosira- oder Lauderia- Arten , und ebenfalls sind ganz sicher die von Bergon abgezeichneten 

 Aggregate von Rhizosolenia stolterfothii rein pathologisch zu erklären. Dagegen ist es ja vielleicht nicht 

 ganz ausgeschlossen, daß die kleineren Zellen, die Cleve und Murray innerhalb einer ganz geschlossenen 

 Membran beobachtet haben, aus einer Mikrospore entstanden sein können, die entweder in der Mutterzelle 

 zurückgeblieben oder in eine leere Hülle eingekrochen ist (vgl. Murray 1. c. t. 1, f. 1, 3, 7, t. 2, f. 1). 



i) Pikrinsäure 2 g, Formol (40-proz.) 40 ccm, Chloroform 2 ccm, Seewasser 1000 ccm. Ich bereite am liebsten die Lösung 

 in doppelter Stärke und verdünne während der Konservierung mit dem Seewasser, in welchem die Planktonorganismen leben. Die 

 Fänge können in der Lösung monatelang aufbewahrt werden. 



