§ 529—531. Die Untersuchung der Zelle. 137 



Färbung: 1. Xylol, abs. Alkohol 95% ig und 65%iger 

 Alkohol. 2. 24 stündige Färbung in Safranin, nach § 393, 

 mehrmahges Waschen in dest. Wasser. 3. Färbung 24 Stun- 

 den in 1 % iger wässeriger Gentianaviolettlösung. Mehrmaliges 

 Waschen in dest. Wasser. 4. Eintauchen in eine wässerige 

 Lösung von Orange G, etwa 1 Minute; ihre Konzentration 

 hängt von dem zu färbenden Objekt ab und muß empirisch 

 durch Kontrolle unter dem Mikroskop festgestellt werden. 

 Embryonales Material erfordert 3 — 4 mal stärkere Konzentra- 

 tion als anderes. 5. Eintauchen in angesäuerten Alkohol 

 (6 — 8 Tropfen einer Mischung von gleichen Teilen abs. Alko- 

 hols und reiner Salzsäure auf 100 ccm abs. Alkohol). Beim 

 ersten Auftreten von violetten Wolken (nach 2 — 3 Sekunden!) 

 werden die Schnitte sofort entfernt, und 6. in reinem Alkohol 

 ordentHch ausgewaschen, um Säure und Farbüberschuß zu 

 entfernen. 7. Langsame Differenzierung unter dem Mikro- 

 skop in einer Mischung von Nelkenöl und wenig abs. Alkohol, 

 bis die Schnitte eine schöne blaue Farbe in kernreichen, eine 

 intensiv gelbe Farbe in kernarmen Teilen aufweisen. 8. Reines 

 Nelkenöl zur Entfernung des Alkohols. 9. Aufstellen der 

 Objektträger, um das Öl ablaufen zu lassen. 10. Auswaschen 

 in Xylol; Kanadabalsam. 



Statt Nelkenöl-Alkohol und reines Nelkenöl nehme ich 

 Terpineol-Alkohol und Terpineol. 



Resultat: Chromatin der ruhenden Kerne dunkelblau, 

 Nukleolus hellrot, Chromosomen bei Kernteilung rot; Chro- 

 matin degenerierender Kerne, in Ruhe oder in Teilung: alle 

 Abstufungen zwischen schmutzigem Braunrot und Violett; 

 im Ovarium sind die Kerne der erwachsenen interstitiellen 

 Zellen rot, ebenso die Blutkörperchen, was, nebenbei gesagt, 

 das beste Zeichen eines guten Safranins ist. Protoplasma 

 hellgelb, in degenerierenden Zellen braun; achromatische 

 Figuren und Zellmembranen deutlich. Das Bindegewebe färbt 

 sich stärker in gelb oder braun; Epithel und Bindegewebe- 

 strukturen aufs schärfste ausgeprägt. Fettropfen bei Osmium- 

 fixierung schwarz. Bei richtiger Übung gibt die Methode 

 ausgezeichnete Resultate. 



529. Weitere Modifikationen von Reinke (94) und Bonney 

 (06 und 08) s. S. 114 und 115 der 7. Aufl. des Taschenbuches. 



530. Sehr gut und in verhältnismäßig einfacher Weise 

 gelingt die Färbung von Centrosomen, wie auch anderer 

 Zellstrukturen mittels der Eisenhämatoxylinmethode von 

 M. Heidenhain (§ 358f.), ev. mit Gegenfärbung durch Orange 

 oder Lichtgrün. 



531. Zur Darstellung des intergranulären Netzwerkes in 



der Zelle legt Altmann (92) frische Gewebestückchen für 

 24 Stunden in molybdänsauren Ammoniak 2,5 g; Chromsäure 



