§ 700—703. Untersuchung des Blutes. 175 



sehen Bluttropfen auf der geräucherten Glasseite des Objekt- 

 trägers aus und setzt die noch feuchte Blutschicht noch- 

 mals höchstens 1 Minute den Dämpfen aus. (Längere Ein- 

 wirkung beeinträchtigt die Färbbarkeit.) Hierauf zieht man 

 ihn 5 mal durch eine Flamme. Vor der Färbung stellt man 

 ihn 1 Minute in eine hellrote Lösung von übermangan- 

 saurem Kali, wäscht ab und färbt (besonders mit Giemsa- 

 lösung s. § 717). 



700. Die Räucherung kann man auch in einem mit ein- 

 geschhffenem Glasstöpsel versehenen Glastubus vornehmen, 

 an dessen Boden man etwas mit der Flüssigkeit befeuchtete 

 Glaswolle geschoben hat. 



701. Statt mit Osmiumdämpfen kann man auch mit 

 Formoldämpfen fixieren, was besonders für Amphibienblut 

 vorzuziehen ist (Weidenreich). 



702. Die Blutzellen niederer Wirbeltiere fixiert man 

 am besten nach Werzberg: Die lufttrockenen Aus- 

 striche werden am folgenden Tag 1 — 2 Minuten durch die 

 Dämpfe von folgendem Gemisch fixiert: 3 ccm Jodtinktur 

 -|- 1 ccm Formalin + 10 Tropfen einer 2% igen Osmiiim- 

 säurelösung und Eisessig ää. Nach einem weiteren Tag 

 wird gefärbt. Färbt man zu früh, so treten Farbinver- 

 sionen auf. Zur Darstellung sehr zarter Elemente, z. B. 

 von Spindelzellen, fixiert man die Ausstriche, solange sie 

 noch feucht sind. 



703. Um die Form der weißen Blutzellen, die bei 

 gewöhnlichen Ausstrichen sehr oft beschädigt wird, gut zu 

 erhalten, empfiehlt sich folgende Methode Weidenreichs: 

 Zunächst gießt man eine nach § 687 bereitete und durch 

 Einstellen in kochendes Wasser verflüssigte Agarlösung in 

 nicht zu dünner Schicht auf einer reinen horizontal stehenden 

 Glasplatte aus. Nach Erstarren (nicht Trocknen!) schneidet 

 man vierseitige Plättchen aus, die kleiner als das später zu 

 benützende Deckglas sind. Mehrere derselben bringt man 



^. dann in Abständen auf eine Glasplatte. Dann tupft man 

 mit einem sorgfältig gereinigten, durch die Flamme gezogenen 

 Deckglas einen nicht zu großen Bluttropfen ab und legt ihn 

 ohne Druck und Schub auf das Agarplättchen auf. Nach 

 5 — 10 Minuten, während welcher man, falls man Bewegungs- 

 studien machen will, die Glasplatte in den Brutofen stellt 

 (37° G), gibt man, ohne das Deckglas zu berühren, einige 

 Tropfen einer l%igen Osmiumsäure von der Seite her unter 

 das Deckglas, so daß der freigebhebene Rand zwischen Glas 

 und Agar völhg ausgefüllt wird. Nach etwa 5 Minuten hebt 

 man das Deckgläschen vom Agar ab, spült mit Wasser ab 

 und färbt die an ihm haftengebhebene Blutschicht (am besten 

 nach Giemsa). 



