§ 742 — 746. Untersuchung des Blutes. 185 



742. Auch mit der »Dopa«- Reaktion (vgl. § 609) fär- 

 ben sich die Granula des myeloischen Systems. 



743. Bei vitaler Karmin- oder Trypanblau-Injektion treten 

 nach Asschoff (13) und Kyiono (14) im Blute rot bzw. blau 

 granulierte mononukleäre Zellen auf, Histiozyten, welche 

 sich hauptsächlich aus losgelösten Retikuloendothelien von 

 Milz, Leber, Knochenmark und Lymphdrüsen rekrutieren (da- 

 gegen Pappenheim 13c und Netousek 14). 



744. Zur Darstellung der Plasma- und Mastzellen 



fixiert man am besten in abs. Alkohol (auch das Orthsche 

 Gemisch oder Formol ist möglich) und färbt die Zelloidin- 

 oder Paraffinschnitte 10 Minuten in polychromem Me- 

 thylenblau von Unna. Dann spült man 2 — 3 Minuten 

 in dest. Wasser ab und differenziert % bis mehrere Minuten 

 in der Glyzerinäthermischung von Unna, die man 

 dazu mit 4 Teilen dest. Wasser verdünnt, bis der Schnitt 

 kornblumenblau erscheint. Nach 5 Minuten langem Aus- 

 waschen in Wasser Abtrocknen mit Fließpapier, kurz in 

 abs. Alkohol, Xylol, Kanadabalsam. Die Granula der Mast- 

 zellen sind rot, die der Plasmazellen blau, ebenso die Kerne. 



745. Auch bei Anwendung der Pappenheim-Unna- 

 schen Methylgrün-Pyroninfärbung (vgl. § 434) treten die 

 Plasmazellen durch ihr tiefrotgefärbtes Protoplasma und 

 den blaugrüngefärbten »Radkern« deutlich hervor. 



C. Darstellung von Fibrin. 



746. Fibrinfärbung nach Weigert. Fixierung in abs. 

 Alkohol, doch ist auch Sublimat oder Formol möglich. 

 Bei Fixierung in chromhaltigen Flüssigkeiten müssen die 

 Schnitte vor der Färbung auf 2 — 3 Stunden in 5% ige 

 Oxalsäure und hierauf ca. % Stunde in eine 0,3% ige Lö- 

 sung von übermangansaurem Kali gestellt werden. 



Färbung: 1. Die aufgeklebten Paraffinschnitte kom- 

 -men nach Entfernung des Paraffins auf mindestens 10 Mi- 

 nuten in konz. Anilinwasser-Gentianaviolettlösung (s. § 407). 



2. Flüchtiges Abspülen in 0,6%iger Kochsalzlösung 

 oder in Wasser. 



3. Einstellen für 10 Minuten in Jod- Jodkalilösung 

 (1:2: 300). 



4. Abtrocknen mit einer mehrfachen Lage von Fließ- 

 papier. 



5. Differenzieren in einer Anilinöl-Xylolmischung (2:1), 

 solange bis das Fibrin distinkt violett erscheint, während 

 das übrige Gewebe sich mehr oder weniger entfärbt hat. 



