§1297—1301. Untersuchung von Haut, Haaren etc. 317 



Methode von Unna. Die Sauerstoff- und Reduktions- 

 orte Unnas werden nach § 612 dargestellt. 



1297. An Schnitten von frisch mit Osmiumsäure 

 fixierter Epidermis differenziert sich das Stratum cor- 

 neum in drei Schichten: in eine schwarze oberflächliche, 

 eine farblose mittlere und eine schwarze tiefere. 



1398. Hornsubstanzen (Keratin) färben sich nach der 

 Gramschen Methode (s. § 397) intensiv blau (Ewert 96). 

 Zur Unterscheidung von anderen, sich ebenfalls nach Gram 

 färbenden Elementen differenziert man kurze Zeit mit 

 schwachem Salzsäure-Alkohol, in dem alles, bis auf die 

 Hornsubstanz entfärbt wird. Mit Eisenhämatoxylin (Hei- 

 denhain) wird sie schwarz tingiert. Bei Anwendung der 

 Malloryschen oder Pasinischen Methode färbt sich das 

 Keratin leuchtend orange bis rot. 



1299. Das Stratum lucidum färbt sich nach Fixierung 

 in Alkohol, Chromsäure (gut auswaschen) oder Müllerscher 

 Flüssigkeit mit Pikrokarmin gelblich. 



1300. Im Stratum granulosum lassen sich die Kerato- 

 hyalinkörner durch Hämalaun, Karmin oder Safranin 

 sehr deutlich färben. Unna überfärbt mit Hämatoxylin 

 und taucht für 10 Sekunden in eine 0,5% ige Lösung von 

 übermangansaurem Kali. Die Keratohyalinkörper sind 

 dann scharf blauschwarz gefärbt. Nach der Methode von 

 Pasini färbt sich das Keratohyalin rot. 



Konzentrierte wässerige Kresylochtviolettlösung 

 (Leonhardt & Co. Mühlheim a. M.) färbt die Keratohyalin- 

 körner metachromatisch rot. Man färbt 3 — 4 Minuten, 

 wäscht mit Wasser aus, zieht die Farbe mit 90%igem Alko- 

 hol aus, bis das Bindegewebe entfärbt ist und bringt rasch 

 durch abs. Alkohol in Xylol und Balsam. Die Hornsubstanz 

 färbt sich dabei violett. 



1301. Nach Waldeyer (82) quellen die Keratohyalin- 

 körner in 1 — 5%iger Kalilauge in der Kälte auf und werden 

 dabei hell. In der Wärme lösen sie sich gleichzeitig mit den 

 Zellen, in denen sie eingeschlossen sind (Pferdehuf). Durch 

 Ammoniak werden die Körner nicht verändert, und man 

 kann dieses Reagens zum Nachweis des Keratohyalins mit 

 Vorteil gebrauchen, da die meisten Gewebe in Ammoniak 

 durchsichtig werden. Salpeter- und Salzsäure wirken ähn- 

 lich wie Alkalien. In Essigsäure und Eisessig bleiben die 

 Keratohyalinkörner längere Zeit unverändert; da die 

 Essigsäure die Epithelien rasch zum Quellen bringt und 

 aufhellt, so kann man diese ähnlich wie Ammoniak vorteil- 



