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Zur Konsorvieniiig älterer Embryonen benutzte ich auch stärkeren Alkolud und FurnioUösung (4 ",,). 

 In Forniol wurden auch Eier mit ältereren Embryonen in toto aufbewalirt. 



Die Härtung geschah in von 40 "/o aUmählich ansteigendem Alkolicd. 



Um liei dem Flüssigkeitswechsel die F^ier möiilichst wetiig aus der Lage zu bringen und die 

 Iveime nicht zu gefährden, sog icli jedesmal die verbrauchte Flüssigkeit vermittelst einer gläsernen 

 Spritze aus den flachen Schalen heraus, um dann die neue Flüssigkeit hinzuzugiessen. Auf diese Weise 

 Hessen sich die ganzen Eier mit dem völlig intakten Keim in seiner natitrlichen Lage auf das beste 

 konservieren. Ziu" Aufbewahrung wurden schliesslich ilie gehärteten Eier und isolierten Embryonen mit 

 Eilöft'ekiien in andere mit 9(i prozentigem Alkohol gefüllte Schalen übergeführt, deren Boden mit einem 

 Wattepolster lielegt war. 



Bei der wissenschaftlichen Verarbeitung dieses Materials verfuhr ich stets in der ^^'eise, dass die 

 Keimanlage zuerst l)ei Lupenvergrösserung untersucht, gemessen und abgezeichnet wurde und zwar in 

 ungefärbtem und gefärbtem, wenn erforderlicli, auch aufgehelltem Zustande. 



Jede so behandelte Keimanlage erhielt ihre genaue, mit der Nummer des Untersuchungsi)rotokolls 

 übereinstimmende Bezeichnung. 



Erst dann wurde zur Einbettung und Anfertigung der Schnittserien geschritten. Mit Bezug auf 

 die erstere will ich hier nur bemei"ken, dass Paraffinsorten mit dem Schmelzpunkt von 52 l)is 56 "• ge- 

 wöhnlich von 52 ". l)enutzt wurden. Zur Abkühlung des Paraffins nahm ich stets Eiswasser. Wesentliche 

 Schrumpfungen wurden nicht beobachtet Ziu" Vorbehandlung diente ('hloroform. 



Ziuu Schneiden der Serien Ijenutzte ich mein grosses Miki-otuni von Schanze, welches mich 

 niemals im Stich gelassen hat. Als Schnittdicke wählte ich 15«. in bestimmten Fällen auch 10 ;«. 

 Wo nicht ausdrücklich anderes bemerkt ist, handelt es sich im Text stets um 15 <, dicke Schnitte. AUe 

 Schnitte fertigte ich mit schräg gestellter Klinge an und brachte jeden einzeln mit der Hand vom Messer 

 auf den Objektträger. Diese Schneidemethode erscheint mir i)ersönlicli für embrj'ologisclie Untersuchungen 

 als die zuverlässigste. Bänderserien mit (juergesteUter Klinge habe ich nicht geschnitten. 



Zum Aufkleben der Schnitte besitzen wir jetzt in der kombinierten Eiweiss-Wasser-'Methode ein 

 geradezu ideales Verfahren, welches an ^'ollkommenlieit und Zuverlässigkeit alles ^^"ünschenswerte leistet. 

 Dieses Verfälu'en scheint in der embryologischen Technilc zur Anfertigung von Serien noch nicht sein- 

 bekannt und allgemein verbreitet zu sein. Ich wiU es daher kurz schildern. 



die feineren Relieh-erhältiüsse der Keimanlagen vorzüglich fixieren, sodass alle Einzelheiten im Flächenbilde unter 

 der Lupe bei zweckmässiger Beleuchtung auf das beste hervortreten. Die meisten plastischen Abbildungen meiner 

 Tafeln sind nach Eisessig-Sublimat-Präparateu gezeichnet. Die Weissfärbung der Präparate ist dabei kein Nachteil, 

 wenn auch zugestanden werden nuiss, dass sie scharfe Beobachtung und Ausnutzung eines günstigen Schattenwiu-fes 

 erfordert. 



Bei dem Studium so zarter Relief\erhältnisse, wie sie die Embryonalaolagen in den ersten Stadien darbieten, 

 muss man die Beleuchtung öftei-s ändern, indem man das Präparat dreht, da nicht alle Einzelheiten bei derselben 

 Beleuchtimg hervortreten. Tageslicht und Sonnenbeleuchtimg habe ich für diese Lupenuntersuchnng zweckmässiger 

 als das zu grelle künstliche (Auer-) Licht gefunden. 



