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Chloroform gebracht. Dann Paraffineinbettung in gewöhnlicher Weise. 

 Entfernung des Paraffins der Schnitte mit Xylol , Kanadabalsam. 

 Alle Zellen sind gefärbt und die Präparate zeigen die verschiedenen 

 Zellformen und ihre Anordnungen in klarer Weise. Methode II: 

 Bei dem eben geschilderten Verfahren kommen die Objekte über- 

 haupt nicht mit Alkohol in Berührung, auf dessen Ausschaltung, be- 

 sonders als Differenzierungsfaktor, von manchen Seiten besonderer 

 Wert gelegt wird. Bei dieser zweiten Methode findet eine geringe 

 Alkoholeinwirkung statt. Der Alkohol dient zur Unterstützung der 

 Fixierung, nicht zur Differenzierung. Verf. verwendet zur Fixierung 

 eine Substanz , die bisher noch nicht in der histologischen Technik 

 benutzt worden ist, das Trichlorbleiacetat (Merck, Darmstadt). Er 

 stellt eine bei Zimmertemperatur gesättigte wässerige Lösung von 

 Trichlorbleiacetat her, die vorrätig gehalten wird. Zur Fixierung 

 wird diese Lösung mit 96prozentigem Alkohol vermischt: 



Trichlorbleiacetat, konzentrierte wässerige Lösung 100 

 Alkohol, 96prozentig 200 



Hierin bleibt das Objekt (z. B. Gehirn der Maus) erst unzer- 

 schnitten, dann in Scheiben zerlegt, bis zu 4 Tagen. Die Färbe- 

 flüssigkeit besteht aus einer zu gleichen Teilen mit destilliertem 

 Wasser verdünnten , konzentrierten , wässerigen Methylenazurlösung. 

 In diese gelangen die fixierten Objekte , nachdem sie ganz kurz in 

 destilliertem Wasser abgespült sind , für ungefähr 3 Wochen. Die 

 Zeit richtet sich nach der Größe des Objektes imd nach der Dicke 

 der Scheiben. Dann chemisch reines Aceton, dessen Einwirkuugszeit 

 bis auf 2 Tage ausgedehnt werden kann, dann 12 Stunden in Chloro- 

 form, dann Paraffineinbettung in gewöhnlicher Weise, Aufkleben der 

 Schnitte mit Eiweißglyzerin, Entfernung des Paraffins durch Xylol, 

 absoluter Alkohol für möglichst kurze Zeit, so daß er nicht differen- 

 zierend wirken kann, Xylol, Kanadabalsam. Schöne klare Zellfärbung, 

 gegenüber der früheren Methode Auftreten einer Metachromasie 

 zwischen Kern und Protoplasma, von denen der erstere blau, das 

 letztere rötlich erscheint. Wie Verf. bemerkt, entwickeln sich manch- 

 mal in dem Objekte und in der Färbungsflüssigkeit Pilze, man wird 

 versuchen müssen, diese auf irgendeine Weise auszuschalten. Verf. 

 hat seine Methode bisher ausprobiert an dem Gehirne von Axolotl, 

 Ratte und Maus. Selbstverständlich kann man das Methylenazur 

 auch zur Schuittfärbung verwenden. Fixiert man das Zentralnerven- 

 system in Alkohol und färbt die Paraffinschnitte nach Entfernung 



