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und Beizen Geltung hat : Der sauerstoffarme Leukofarbstotf hat keine 

 Affinität zum sauerstoffarmen (reduzierenden) Eiweiß, dagegen starke 

 Affinität zum sauerstoffreichen (oxydierenden) Eiweiß. Das ist der 

 Grund, weshalb der Leukofarbstoff vom tierischen Gewebe anders, 

 und zwar in beschränkterem Umfange gespeichert wird als der ent- 

 sprechende (oxydierte) Farbstoff. Der Unterschied zwischen Methy- 

 len b 1 a u f ä r b u n g und Leukomet hylenblaufärbuug der Ge- 

 webe offenbart sich am schlagendsten durch die vergleichende Fär- 

 bung der Henle sehen Scheide sowie der Kerne des Knorpels, der 

 Ganglien und Plasmazellen. Letztere werden durch RW nicht ge- 

 färbt , da ihr Nuklein (primärer , stabiler Sauerstoffort) allen seinen 

 Sauerstoff an die ihn dicht umgebende Zytose (Granoplasma) abge- 

 geben hat, welche demgemäß einen sekundären, labilen Sauerstoffort 

 darstellt. Zieht man die Zytose durch warme Borsäurelösung aus 

 dem Plasmazellenleibe aus, so bleibt der im Nuklein sich ansammelnde 

 Sauerstoff in den Plasmazellenkernen erhalten und die RW- Färbung 

 ergibt nun die gewöhnliche Kernfärbung auch in den Plasmazellen. 

 Sehr lehrreiche Unterschiede zwischen Säureorten und Sauerstofforten 

 zeigen auch die Vergiftungen der^Gewebsschnitte mit SO^, H2S, Pyro- 

 gallol , Salvarsan , Formol , absolutem Alkohol , Azeton und Zyan- 

 kalium. — Darstellung der Sauerstofforte durch die 

 RW-Methode: 1) Vorbereitung. Die Gewebe können frisch 

 in überlebendem Zustande untersucht werden, besser aber wartet man 

 die „agonale Schwankung" ab und untersucht 24 Stunden später die 

 trocken auf Eis gelegten Gewebsstücke. In jedem Falle muß das 

 Gewebsstück unter der Wasserleitung von Blut befreit werden. Muß 

 die Untersuchung einige Tage hinausgesc'hoben werden, so bringt man 

 die Stücke in eine Petri- Schale auf eine 5 mm hohe Salzschicht von 

 gleichen Teilen Kochsalz und Kalichlorat , die man mit so wenig 

 Wasser bedeckt , daß die Stücke feucht in konzentrierter Salzlösung 

 liegen, und stellt die Petri -Schale auf Eis. Die frischen Gewebs- 

 stücke werden direkt mit dem Gefriermikrotome geschnitten, die auf 

 Salz konservierten müssen vorher durch Auswaschung gut und mög- 

 lichst rasch vom Salze befreit werden , da bei längerem Aufenthalte 

 in der sich verdünnenden Salzlösung die Sauerstofforte leiden würden. 

 Zu diesem Zwecke drückt man von oben her in den Hals eines großen 

 Glastrichters etwas Watte so tief ein, daß darauf gegossenes Wasser 

 ziemlich rasch hindurchtropft. Auf den Wattebausch kommen die in 

 Salz konservierten Gewebsstücke. Man sorgt durch Nachgießen für 

 einen beständigen Wasserstrom und hält diesen etwa 30 Minuten im 

 Gange. 2) Schneiden. Die Dicke der Gefrierschnitte soll nicht 

 unter 25 /x gehen, da sie durchsichtig genug sind und sonst zu leicht 

 zerreißen (eine vorhergehende Härtung in Formol muß ja eben ver- 

 mieden werden). 3) Färbung. Man halte sich 100 g einer 0"5- 

 prozentigen Lösung von Methylenblau vorrätig, die man mit etwa 

 7 Tropfen einer 25prozentigen Salzsäurelösung angesäuert hat. Von 



