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herstellen kann, ebenfalls eine spezifische Affinität zu den Mitocliondrien 

 und kann vorteilhaft zur vitalen Färbung benutzt werden. Da dieser 

 Farbstoff rot ist, ist er oft praktisch zu verwenden in Verbindung 

 mit anderen blauen und grünen Farbstoffen, wo Janusgrün nicht ver- 

 wendbar wäre wegen der Ähnlichkeit seiner Färbung. Diäthylsafranin 

 kann in folgender Weise leicht aus .lanusgrün hergestellt werden: 

 1) Herstellung einer gesättigten Lösung von Janusgrün in destilliertem 

 Wasser. 2) Hierzu setze man etwas fein zerteiltes Zink und einige 

 Tropfen Salzsäure. Die Lösung nimmt zunächst eine hellkarminrote 

 Färbung an und wird dann heller, da sich das salzsaure Salz der 

 Leukobase des Safranins bildet. 3) Filtrieren. Das Filtrat wird 

 an der Luft geschüttelt und dabei reoxydiert sich die Leukobase. 

 4) Dann sättigt man die Lösung mit schwefelsaurem Natrium , wo- 

 durch der Farbstoff ausfällt. Es ist hierbei oft nötig, etwas Wärme 

 anzuwenden. Es bildet sich ein dunkelroter Niederschlag. 5) Fil- 

 trieren. Man sammelt den Niederschlag auf dem Filter, wäscht ihn 

 aus mit einer gesättigten Lösung von schwefelsaurem Natrium und 

 trocknet ihn. 6) Der trockene Niederschlag wird in absolutem Al- 

 kohol gelöst. 7) Man filtriere und lasse das Filtrat bis zur Trocken- 

 heit verdampfen. 8) Man löse die getrocknete Masse in der ge- 

 wünschten Konzentration in destilliertem Wasser oder in Salzlösung. — 

 Dieser Farbstoff wird ebenso angewendet wie Janusgrün , aber in 

 einer Lösung von 1 : 1000. Um gute Ergebnisse zu erhalten , soll 

 man ihn alle 2 bis 3 Tage frisch herstellen. Er ergibt nicht so 

 gleichförmig gute Resultate wie das Janusgrün. — Die hier an- 

 gegebenen Färbungsmethoden haben verschiedene Vorteile : sie sind 

 einfach, schnell und geben gleichmäßige Resultate, in Zeit von 5 Mi- 

 nuten kann man oft eine sehr schöne Mitochondriafärbung haben, 

 man erspart also Zeit und braucht nicht tagelang zu warten, um zu 

 sehen, ob das Präparat gut geworden ist oder nicht. Die durch die 

 Fixierung bedingten Schädlichkeiten werden vermieden, und die Mito- 

 chondrien werden in Zellen untersucht, die in ihrer Form nicht verändert 

 sind durch das Ausstreichen auf dem Deckglase oder Objektträger. 

 Mit diesen Methoden kann man Mitochondria beobachten in sich tei- 

 lenden Zellen des Knochenmarkes (Meerschweinchen) und in mensch- 

 lichen Leukozyten während der amöboiden Bewegung und der Phago- 

 zytose. Weiter sind sie geeignet zur Untersuchung von Blutkrankheiten 

 und blutbildenden Organen. — Selbstverständlich muß man auch die 

 Grenzen dieser Methode kennen , um nicht in Irrtümer zu verfallen. 



Schielf er decker (Bonn). 



Kyes , P. , The pbysiological destruction of erytliro- 

 cytes in birds (Internat. Monatsschr. f. Anat. u. Physiol. 

 Bd. 31, 1915, H. 10—12, p. 543—550 m. 1 Tfl.). 

 Injiziert man Bakterien oder andere kleine Fremdkörper in den 



Blutstrom der lebenden Taube, so werden diese schnell aus dem Blut- 



