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toxylins : Zur Oxydierung des Hämatoxylins stellt man ein enghalsiges 

 Glas mit einer O'öprozentigen Hämatoxylinlösung in TOprozentigem 

 Alkohol für 2 bis 3 Tage in einen Thermostaten oder in die Nähe 

 eines warmen Ofens. Das Glas bleibt offen und wird 2- bis 3mal 

 am Tage durchgeschüttelt. Man soll dann eine klare, braune Flüssig- 

 keit erhalten. Sobald das Objekt in diese Flüssigkeit kommt, ent- 

 steht in seiner Umgebung eine schwarze, wolkige Trübung, daher muß 

 die Hämatoxylinlösung durch eine frische ersetzt und auch im Laufe 

 der ersten 24 Stunden 2- bis 3mal erneuert werden. Aus dem 

 Hämatoxylin kommen die Objekte zum Auswaschen in 70prozentigen 

 Alkohol , in dem sie ohne Schaden noch längere Zeit verbleiben 

 können und in dem sie sich sehr gut konservieren lassen. Der Alkohol 

 wird so lauge gewechselt, bis er kaum gelblich gefärbt wird, dann 

 kommt das Präparat für 24 Stunden in eine einprozentige Lösung 

 von FuchsinS, dann in 96prozentigen Alkohol zur Entfernung des 

 überflüssigen Farbstoffes. Nach Wunsch können die Präparate außer- 

 dem noch mit der Mischung von van Gieson gefärbt werden. Die 

 Präparate werden eingebettet in Celloidin- Paraffin, oder noch besser, 

 nach 0. Schul tze , in Collodium- Paraffin. Es ist nicht nötig, sie 

 nach dem Abwaschen des Fuchsins noch in absoluten Alkohol zu bringen, 

 sie werden einfach nach dem 96prozentigen Alkohol in eine Mischung 

 von gewöhnlicher 4prozentiger Collodiumlösuug mit 96prozentigem 

 Alkohol (1:2) gebracht und bleiben darin 24 Stunden liegen. Von 

 hier aus kommen die Präparate in eine Mischung von Zedernholzöl 

 mit Chloroform zu gleichen Teilen und bleiben hierin so lange, bis sie 

 auf den Boden sinken, etwa 4 Stunden; sodann kommen sie für 5 bis 

 10 Minuten zuerst in eine Portion von reinem Paraffin (Schmelzpunkt 65°) 

 dann in eine andere. Da die Schnitte 2 /t dick sein sollen, war es 

 anfangs recht schwer, gute Serien zu erhalten, bis Verf. ein Tetrander- 

 mikrotom nach P. Mayer, neuester Konstruktion, benutzte. Bei der 

 oben beschriebenen Methode erhält man Schnitte mit violett oder 

 dunkelviolett gefärbter Muskelsubstanz und rot und rosa gefärbtem 

 Bindegewebe. Dabei sieht man die Struktur der Muskelfasern sehr 

 deutlich: Die Discs, das Sarkoplasma, das Sarkolemm, die Kerne, 

 die Chondriokonten und ebenfalls die Bindegewebsfasern, welche sich 

 scharf von der dunkelgefärbten Muskelsubstanz ablieben , wodurch 

 die Beziehung der beiden Substanzen zueinander sehr deutlich zu- 

 tage tritt. Der direkte Übergang der Muskelfibrillen in die Sehnen- 

 fibrillen ist besonders deutlich an den Muskelfasern, die gerade oder 

 fast gerade an die Sehne herantreten. Um das auch au den schräg 



