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etwas Thymol auf dem Objectträger aus. Es erscheinen jetzt die 

 Zellkerne dunkelrotli , das Protoplasma rosa , die elastischen Fasern 

 dunkelblau auf dem im allgemeinen weissen oder leicht röthlichen 

 Grunde. Dieser Gegensatz von roth und blau erleichtert die mikro- 

 skopische Untersuchung sehr, auch in den Fällen, wo sich die ela- 

 stische Substanz in Form von äusserst feinen Fibrillen oder von 

 kaum wahrnehmbaren Körnchen vorfindet. Bei dieser modificirten 

 Methode kann die Differenzirung auch mittels 25procentiger Salpeter- 

 säure statt des kaustischen Kali ausgeführt werden. Man erhält 

 sehr elegante und lehrreiche Präparate, welche aber etwas weniger 

 stark gefärbt sind. — Um zu controlliren , dass die hier blau ge- 

 färbten Elemente auch wirklich elastische seien, hat Verf. die Me- 

 thode bei bekannten Organen von erwachsenen Thieren geprüft und 

 vollkommen identische Bilder erhalten. Leider ist die Färbung da- 

 bei nicht immer gelungen. Als Ursachen hierfür sieht Verf. an, 

 einmal , dass die Qualität des Fuchsins nicht immer die gleiche ist, 

 obgleich es derselben Fabrik entnommen wird , und dann, dass die 

 Salpetersäure mitunter nicht rein genug war. Letztere muss chemisch 

 rein sein oder wenigstens keine salpetrige Säure enthalten. — So 

 vollkommen diese Methode auch war, so ist sie doch nicht genügend, 

 um alle Fragen aufzuklären. Er hat aus diesem Grunde auch 

 andere Metboden angewendet, z. B. die von Wolters (Vanadium- 

 chlorid und essigsaure Thonerde; Färbung mit Hämatoxylin nach 

 Kultschitzky, Differenzirung mittels Eisenchlorid und WEiGERT'scher 

 Borax-Blutlaugensalzlösung). Er fand diese Methode für bestimmte 

 Zwecke sehr brauchbar, weniger zur electiven Faserfärbung als zur 

 Demonstration des Zusammenhanges , der zwischen den elastischen 

 Fasern und den Bindegewebsfasern existirt , da die letzteren bei 

 dieser Methode sehr gut hervortreten. Brauchbar ist sie ferner zum 

 Studium der Zellelemente und aller bei diesen sich vorfindenden 

 Veränderungen'. Für diese letztere Untersuchung kann man auch 

 die Amnionmembran mit der folgenden, frisch bereiteten Mischung 



fixiren : 



Kupferacetat, gesättigte wässerige Lösung . . 4 Th. 

 Osmiuimäure, einprocentige Lösung 1 „ 



Fixirungsdauer 3 bis 4 Stunden ; dann Behandlung des Gewebes 

 mit Gallussäure. Diese Fixirungsmethode erhält einmal die Gewebs- 

 structur intact und dient zugleich als eine gute Beize, ohne die Mem- 

 bran schrumpfen zu lassen (was bei anderen osmiumhaltigen 

 Fixirungsflüssigkeiten der Fall ist). Schiefferdecker (Bonn . 



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