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Grunde. Bei Spirillum volutans, Bacterium coli und Paratyphus setzt 

 man zweckmäßig einen Tropfen einer 5 prozentigen Dinatriumphospliat- 

 lösung hinzu; hierbei entsteht ein feinkörniger Niederschlag, der die 

 Darstellung dieser noch feineren Einzelgeißeln bewirkt. 



W. Reidemeister {Halle a. S.). 



Gottberg, M. , Methoden zur Darstellung von Spirochä- 

 ten und Trypanosomen in Organschnitten (Arch. 

 f. Hygiene Bd. LXV, 1908, H. 3, p. 243). 



Verf. benutzte zum Fixieren vorzugsweise Zenker sehe Flüssig- 

 keit oder Formalin. Einbettung usw. in Paraffin wie üblich. 



Spirochäten. 1) Giemsa- Lösung: Ein Tropfen alter Giemsa- 

 Lösung mit destilliertem Wasser in Farbgläser; Schnitte von 5 fi 

 Dicke bleiben darin 2 bis 3 Tage ; darauf Abspülen in destilliertem 

 Wasser, Kontrolle unter dem Mikroskop, ob stark gefärbt; 3 bis 10 

 Sekunden in 95prozentigem Alkohol, bis Schnitte fast frei von Farb- 

 stoff; kurz abspülen in absolutem Alkohol, überführen in Xylol, Ein- 

 betten in Zedernöl. 



2) Färbung nach Heidenhain. Vorbehandlung wie 1. Darauf 

 24 Stunden in 2^/2prozeiitige Eisenalaunlösung, abspülen in destil- 

 liertem Wasser; einen bis 2 Tage in Weigert s Hämatoxylin, abspülen 

 in destilliertem Wasser; Differenzierung in '^j^- bis 2 prozentiger Eiseii- 

 alaunlösung einige Minuten. (Kontrolle unter dem Mikroskop.) Dauer, 

 bis Blutkörperchen oben deutlich sichtbar werden. Darauf ^/o stün- 

 diges Waschen in Leitungswasser. 



3) Hansens Eisenhämatoxylingemisch (10 g Eisenalaun in 150 cc 

 warmen destillierten Wassers gelöst, desgleichen 1'6 g Hämatoxylin 

 puriss. crystall. in 75 cc warmen Wassers; nach Abkühlen wird 

 die Eisenlösung langsam in die Hämatoxylinlösung gegossen und 

 das Gemisch eine Minute gekocht. Das Farbgemisch soll braun aus- 

 sehen und sauer reagieren). Die Objekte kommen 15 bis 30 Minuten 

 in die Lösung; ist ('berfärbung eingetreten, differenzieren mit eiu- 

 bis 2 prozentiger Eisenalaunlösung oder verdünnter Schwefelsäure 

 oder Essigsäure. 



Trypanosomen: Zum Fixieren ist ZENKERSche Flüssigkeit 

 am besten geeignet; zum Färben eignen sich Hämatoxylin, Hära-atein, 

 Heidenhaixs Methode und das Eisenhämatoxylingemisch Hansen. 



Hierdurch gute Kernfärbung der Trypanosomen, Blepharoplast 

 gut darstellbar, desgleichen Protoplasmakörper; undulierende Mein- 

 brau selten deutlich. Eine Nachfärbung des Protoplasmas ge- 



