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ziellen Zellstudien und vor allem zur Erforschung der genetischen 

 Beziehungen nicht geeignet oder bedarf doch jedenfalls der sorg- 

 fältigsten Kontrolle durch andere Methoden der allgemeinen histo- 

 logischen Technik, Sehr viel mehr als die Trockenmethode leistet 

 schon die Fixierung des feuchten Ausstrichpräparates durch Ein- 

 tauchen in einige der üblichen histologischen Fixierungsmittel und 

 die vom Verf. empfohlene Osmiumdampf- Fixation des feuchten Prä- 

 parates, besonders mit nachfolgender GiEMSA-Färbung. Noch bessere 

 Resultate gibt aber für Untersuchungen des Blutes, der Lymphe und 

 der Flüssigkeiten der serösen Höhlen die nur wenig moditizierte 

 ÜEETjENSche Agarmethode zur Darstellung der Blutplättchen. Man 

 stellt sich eine einprozentige Lösung von Agar in 0"8 prozentiger 

 Kochsalzlösung her, die man zweckmäßig zu je 3 bis 5 cc in sterile 

 Reagenzgläser abfüllt; die erstarrte Masse läßt sich im gut ver- 

 schlossenen Glase auf diese Weise längere Zeit aufheben , aber es 

 ist dringend zu raten, nicht länger als 4 Wochen. Zur Untersuchung 

 der in Betracht kommenden Flüssigkeit bringt man den Agar im 

 Glase zunächst durch Erwärmen in kochendem Wasser zum Schmelzen 

 und gießt ihn dann auf einer reinen , völlig ebenen Glasplatte in 

 nicht zu dünner Schicht aus. Ein Zusatz phosphorsaurer Salze, wie 

 es Deetjen angibt, ist direkt schädlich. Ist der Agar wieder 

 vollständig erstarrt und gut schneidbar geworden , so schneidet 

 man kleine viereckige Plättchen aus der Schicht aus, die allseitig 

 ein gutes Stück kleiner als die zur Benutzung kommenden Deck- 

 gläser sein müssen. Diese Plättchen bringt man in größeren Ab- 

 ständen auf eine ebene reine Glasplatte. Dann tupft man mit einem 

 aufs sorgfältigste gereinigten Deckglase rasch einen nicht zu großen, 

 aber auch nicht allzu kleinen Tropfen Blut oder andere Untor- 

 suchungsflüssigkeit ab und legt das Glas mit dem hängenden Tröpf- 

 chen nach unten, vorsichtig und ohne zu drücken oder zu schieben, 

 auf das Agarplättchen, worauf sich die Flüssigkeit in dünner Schicht 

 zwischen Agar und Deckglas ausbreitet. Bis zu der erst später er- 

 folgenden Abnahme des Glases hat man sorgfältig darauf zu achten, 

 daß man das Glas nicht berührt oder gar verschiebt. Will man die 

 Zellen zur amöboiden Bewegung bringen, so legt man die Glasplatte 

 mit den beschickten Agarplättchen in einen Thermostaten von etwa 

 37 ^ C und läßt sie etwa 5 bis 10 Minuten darin ; eben so lange 

 Zeit wartet man, wenn man die Präparate in gewöhnlicher Zimmer- 

 temperatur beläßt. Hierauf gibt man mit einer Pipette, ohne jedoch 

 das Deckglas zu berühren , einige Tropfen einer einprozentigen 



