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außerdem kamen einige Präparate von Ammocoetes und Spinax niger 

 zur Untersuchung. Fixiert wurde mit gleich gutem Erfolge entweder 

 in konzentrierter wässeriger Sublimatlösung oder in Hermann scher 

 Flüssigkeit. Die besten Bilder der Zellteilungsfiguren wurden nach 

 Fixierung in Hermann scher Flüssigkeit durch Färbung auf dem 

 Objektträger erhalten, und zwar entweder durch Behandlung der 

 Schnitte mit ^/„prozentigem wässerigem Hämatoxylin und einprozen- 

 tiger Lösung von neutralem chromsauren Kali oder mit Safranin und 

 Blochmann scher Flüssigkeit. Die letztere Methode, die sich übrigens 

 auch sehr gut zum Studium des Zentralkörpers eignet, wurde so 

 ausgeführt, daß die Schnitte zunächst etwa für 24 Stunden in eine 

 alkoholische Safraninlösung (1 g Safranin, 100 ccm Wasser, 250 ccm 

 95prozentigen Alkohol), dann nach kurzem Abspülen mit Wasser für 

 20 bis 40 Minuten in das Blochmann sehe Gemisch (O'Olprozentige 

 Lösung von triphenylrosanilintrisulfosaurem Natrium in gesättigter 

 wässeriger Pikrinsäurelösung) gebracht und schließlich nach aber- 

 maligem kurzen Abspülen rasch durch Alkohole steigender Konzen- 

 tration und X^dol in Kanadabalsam übergeführt wurden. In den auf 

 diese Weise behandelten Präparaten sind alle Kernelemente stark 

 rot, das Zellplasma, der Zentralkörper und die Grundsubstanz intensiv 

 blau gefärbt. Die gleichen Schnitte , besonders wenn sie nicht in 

 Kanadabalsam, sondern in Wasser eingeschlossen werden, eignen sich 

 auch sehr gut zum Studium der Strukturen der Grundsubstanz. — 

 Die mit Sublimat fixierten Objekte wurden zur Untersuchung ruhender 

 Kerne mit einer Lösung von Jodgrün -Säurefuchsin nach Erlanger 

 behandelt. (Jodgrün und Säurefuchsin im Verhältnis 2 : 1 in lOpro- 

 zentigem Glyzerin gelöst.) Diese Flüssigkeit färbt nach kurzer Ein- 

 wirkung, einige Minuten genügen meist, die chromatische Kernsubstanz 

 grün und die Nucleolen rot. Zum Studium der Kernteiluugsfiguren, 

 insbesondere zum Zählen der Chromosomen ist jedoch Färbung mit 

 Eisenhämatoxylin am meisten zu empfehlen. Neben der von Hansen 

 empfohlenen Methode zur Untersuchung der Knorpelgrundsubstanz 

 (Methylenblau, Pikrinsäure -Fuchsin, Essigsäure), welche jedoch für 

 den embryonalen Knorpel nicht besonders geeignet ist, da die Schnitte 

 eine fast ausschließlich blaue Farbe annehmen , wurde mit gutem 

 Erfolg Dreifachfärbung mit Boraxkarmin, Bleu de Lyon und Bismarck- 

 braun angewendet. Hierbei werden die Objekte zunächst vor der 

 Einbettung in toto etwa 24 Stunden mit Boraxkarmin gefärbt und 

 dann etwa 30 Minuten lang mit salzsaurera Alkohol ausgezogen. 

 Die aus solchem Material angefertigten Schnitte werden zuerst mit 



