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bemerkbar. Die Pseudoinitosen von 0. anguina hatten einen kräftigen Stich ins Violett 

 und waren viel weniger intensiv gefärbt wie die echten Chromosomen, selbst nach 40 Stunden 

 lano-er Färbuno-. Etwas reiner, aber auch schwach war die Färbung bei 0. tenuis, die 

 Zentralkörner der^C. princeps nahmen nur einen schwach blaugrünen Hauch an. 



Der Gesamteindruck aller dieser Färbungen ist keineswegs der, daß die Substanz der 

 Pseudomitosen aus Chromatm, überhaupt aus einem Proteinkörper bestehen könne, sondern 

 weist auf ein Kohlehydrat hin. Ich muß an dieser Stelle noch auf einige Bemerkungen 

 Kohl's eino-ehen, der Chromatin der Cyanophyceen und Zentralkörner auch mit Hilfe einiger 

 Färbuno- zu trennen versucht, die Jodfärbungen dabei aber leider vernachlässigt, in seiner 

 Tabelle S. "21S — 221, zeichnet sich überhaupt die Kolumne für das Cbromatin durch sehr 

 viel leeren Raum aus. 



Von den Karminlösungen wird zwar in der Tabelle, S. 218, erwähnt, daß sie die 

 Zentralkörner nicht färben, beim Chromatin finden sich nur vielsagende Striche, allein von 

 Ammoniakkarmin wird erwähnt, daß es das Chromatin von Tohjpotltrix nicht färbt. Auch 

 in der Zusammenstelluno- S. 207 hat es Kohl unterlassen, das Verhalten des »Chromatins« 

 zu den Karminlösuno-en zu erwähnen; S. 206 heißt es bei Essigkarmin: Chromosomen rot, 

 Zentralkörner heller als der übrige Inhalt, mitunter farblos. 



Das Rutheniumrot, das Kohl (I, S. 27) dazu benutzt, das Vorhandensein von nicht 

 eiweißartio-en Körpern, die die Eiweißreaktion der Zentralkörner verdecken sollen, zu de- 

 monstrieren, ist keineswegs hierzu geeignet, denn es färbt nach Nie olle und Cantacuzene (I) 

 auch die Zellkerne, besonders das Chromatin lebhaft rot. Ich habe mit diesem Reagens die 

 Antheren von Lilium (Alkoholfixierungj behandelt und fand gute Rotfärbung der ruhenden 

 Kerne in der Antherenwand, keine Färbung in den Chromosomen. Die Pseudomitosen von 

 0. tenuis Saale) färbten sich gut rosa. Das Reagens dürfte als unsicher aus der Beweis- 

 führung auszuscheiden sein. In Kohl's Tabellen fehlt wieder jede Angabe über die Färbung 

 des Cyanophyceenchromatins mit Rutheniumrot, die Zentralkörner sollen rot gefärbt werden 

 bei deutlicher Quellung. 



Safranin in der bekannten Kombination Safranin- Gentiana-Orange soll nach Kohl 

 (I, S. 208) die Zentralkörner nicht, die Chromosomen rot färben, jedoch wird bemerkt, daß 

 diese relativ wenio- fingiert sind. Ja auf S. 20 heißt es diesmal von den Zentralkörnern: 

 »Safranin leistet schlechte Dienste, weil es das Plasma ebenfalls färbt und die relativ schwache 

 Färbuno- der Körner verdeckt.« Auf S. 20 sind also die Zentralkörner relativ schwach ge- 

 färbt, auf S. 208 farblos, dafür sind die Chromosomen relativ wenig fingiert, Der Gegensatz, 

 der in Kohl's Tabelle (I, S. 218 zwischen Zentralkorn und Chromatin gegenüber Safranin her- 

 vorgehoben ist, muß zweifelhaft bleiben. Ich habe mit Safranin-Anilinwasser für sich allein, 

 oder mit Gentiana-Orange kombiniert, niemals eine wirklich lebhafte, an Kernfärbung er- 

 innernde Färbung der Pseudomitosen, die von O. tenuis in Fig. 51 abgebildet sind, erhalten. 

 Auch bei anderen Oscillarien war nicht mehr zu erreichen. Safranin ist demnach zur 

 Unterscheiduno- von Zentralkörnern und Chromosomen im Sinne Kohl's nicht zu verwerten. 



Die Gram'sche Färbung verleiht nach Kohl (I, S. 218 den Zentralkörnern eine 

 dunkel indigoblaue, dem Chromatiu eine schwarzblaue Färbung, auf S. 205 heißt es unter 

 gesperrtem Druck, daß die Zentralkörner ungefärbt sind, auf S. 20 heißt es, daß die Zentral- 

 körner dunkelindigoblau sind, allmählich sich entfärben. Bei gewisser Differenzierung fand 

 ich die Pseudomitosen der O. tenuis aus der Saale und der in Fig. 53 abgebildeten Form 

 gut gefärbt, aber schnell entfärbbar. Auch Kohl (I, S. 126) gelang es nicht, so zu differen- 

 zieren, daß gute Kernteilungsfiguren sich scharf abhoben. Irgend welchen "Wert für Unter- 

 scheidung von Chromatin und Zentralkörnern hat diese Färbung auch nicht. 



