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machte Eprouvette gebracht. Der Sproß war nach 24 Stunden intensiv braun und hatte 

 seine grüne Farbe ganz verloren. Auch wenn ich den Fucus rasch in eine hohe mit heißer 

 Agarlösung gefüllte Eprouvette brachte, wobei er momentan ergrünte, so färbte er sich 

 dennoch wieder braun, obwohl das erstarrte Agar den Sauerstoff abhielt. 



Ich war ferner bemüht, ein Mittel zu finden, um die Phykophäinbildung überhaupt zu 

 unterdrücken und erinnerte mich, daß de Vriesi) e i n Verfahren angegeben hat, um von solchen 

 phanerogamen Pflanzen, die sich beim Absterben zum Ärger des Sammlers verfärben und eine 

 braune o°der schwärzliche Farbe annehmen, farblose Spirituspräparate zu erhalten. Der Genannte 

 behandelt zu diesem Zwecke die zu präparierenden Pflanzen mit einer Lösung von 2# Salz- 

 säure in Wasser oder in absolutem Alkohol. Nach de Vri es beruht die postmortale Bräunung 

 vieler Pflanzen auf einer Oxydation farbloser, im Zellsaft gelöster Verbindungen und kann 

 durch verdünnte Säuren verhindert werden, indem diese die Chromogene ungefärbt ausziehen. 

 Es schien mir naheliegend, diese Methode auf die Phaeophyceen anzuwenden, denn möglicher- 

 weise ließ sich hierdurch die Bildung von Phykophäin verhindern. 



Als ich nun den Versuch zunächst mit alkoholischer Salzsäure (98 Vol. abs. Alkohol -f- 

 2 Vol. käufl. Salzsäure) und Fucus virsoides machte , zeigte sich etwas sehr Auffallendes. 

 Die Flüssigkeit wurde zunächst gelbbraun, dann grünlich und schließlich nach mehreren 

 Stunden prachtvoll blaugrün. Um nun zu eruieren, ob vielleicht das Chlorophyll oder irgend- 

 ein anderer Körper die blaue Färbung hervorruft, wurde zunächst eine größere Menge Fucus 

 virsoides mit absolutem Alkohol ohne Salzsäure extrahiert und die Lösung nach vorherigem 

 Zusatz von etwas Wasser mit Benzin ausgeschüttelt. Es sammelt sich dann im Benzin das 

 Chlorophyll, während der gelbe Farbstoff im Alkohol verbleibt. Trennt man die beiden 

 klar gewordenen Flüssigkeiten mittelst des Scheidetrichters, so kann man sich leicht über- 

 zeug, daß nicht das Chlorophyll, wohl aber die gelbe Flüssigkeit nach Zusatz von etwas 

 Salzsäure den blauen Körper liefert. Das Chlorophyll wird, weil es in Chlorophyllan (Hypo- 

 chlorin) übergeführt wird, bräunlich, die gelbe Lösung aber wird nach etwa > /4 Stunde grünlich 

 und später blaugrün bis indigblau. Diese Reaktion, die sich bei höherer Temperatur viel 

 rascher vollzieht, ist sehr auffallend, sie gelingt nicht bloß mit Fucus virsoides J. Ag., sondern 

 auch mit Dichjota dichotoma (Hudson) Lamour, Cystosira abrotanifolia Ag., Fucus serratus L., 

 Laminaria digitata (L.) Lamour und Halidnjs süiquosa (L.) Lyngb., Padirm Pavonia (L.) 

 Gaillon, Dictyopteris polypodioides (Desf.) Lamour, überhaupt mit allen Phaeophyceen, die 

 ich daraufhin geprüft habe. Entsprechende Lösungen von grünen Algen oder von Blättern 

 höherer Phanerogamen zeigen diese Reaktion nicht. — 



Da die Braunalgen Carotin enthalten, so ist es auch in der gelben ausgeschüttelten 

 Lösung sicher vorhanden. Allein die blaue Reaktion kann nicht von Carotin herrühren, 

 weil dieses sich mit so verdünnter Salzsäure nicht blau färbt. 



Man kann sich in folgender Weise überzeugen, daß nicht das gewöhnliche Carotin, 

 sondern ein neben diesem vorkommender Körper die blaue Färbung veranlaßt. Kleine 

 Thallusstücke von Fucus, Dictyota und anderen Phaeophyceen wurden der von mir 2) einge- 

 führten Kalimethode zum Nachweis des Carotins unterworfen, dann in destilliertem Wasser 

 gewaschen und nun in 1% Salzsäure liegen gelassen. Diese also behandelten Gewebestücke 

 zeio-en in den Zellen überall zahlreiche orangerote oder gelbe Carotinkristalle. Würde 



i) de Vries, H., Eine Methode zur Herstellung farbloser Spirituspräparate. Ber. d. d. bot. Ges. 



1889. S. 298. . 



») Molisch, H., Die Kristallisation und der Nachweis des Xantophylls (Carotins) im matte. 



Ber. d. d. bot. Ges. 1896. 14. S. 18. 



