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waren nicht zu beobachten. Sporenbildung fehlt. Bewegungsorgane sind Geißeln von etwa 

 doppelter Körperlänge, die peritrich angeordnet sind. Sehr häufig wurde lophotriche 

 Anheftung beobachtet, aber wohl nur vorgetäuscht dadurch, daß sämtliche Geißeln nach 

 dem einen Körperpol zu an den Leib angeklebt waren. Noch viel häufiger war zu beobachten, 

 daß alle Geißeln an dem einen oder in der Nähe des einen Poles zu einem ziemlich dicken 

 Schopf miteinander verflochten waren. 



Der Spaltpilz ist somit in die Gattung Bacillus Migula, Bacterium Lehm, und Neumann, 

 Bactridium A. Fischer zu stellen. Ich schlage den Namen Bac. chitinovorus vor, da es 

 erwünscht ist, eine kurze Bezeichnung für ihn zu haben und es nicht gelingt, ihn mit einer 

 schon bekannten und benannten Form zu identifizieren. 



Es sollen nun zunächst die an Rohkulturen bereits gemachten Erfahrungen über die 

 Bedeutung der Reaktion der chitinhaltigen Nährlösung sowie des Zusatzes bestimmter 

 Stoffe zu derselben mit Hilfe von Reinkulturen vertieft werden : Auch Reinkulturen können 

 eine entschieden saure Reaktion nicht vertragen* mit Monokalium- statt mit Dikaliumphosphat 

 versetzte Lösungen bleiben dauernd klar. Feinere Unterschiede ergeben sich, je nachdem 

 gefälltes oder ungefälltes Chitin Verwendung findet. Ungefälltes Chitin nämlich wird nicht 

 zersetzt, sobald die Lösung neutrales Lackmuspapier nur eben schwach rötet: die Zersetzung 

 von gefälltem Chitin ist hingegen bei ganz schwach saurer Reaktion noch eben möglich. 

 Beispielsweise blieb eine mit ungefälltem Hummerchitin beschickte, außerdem Magnesium- 

 sulfat (0,03 °/o) und den üblichen Kochsalzzusatz (l 1 /2°/o) enthaltende Lösung dauernd klar, 

 wenn als Kalium- und Phosphorquelle gleiche Mengen (je 0,03 °/o) Mono- und Dikalium- 

 phosphat dienten ; (neutrales Lackmuspapier erhält durch Betupfen mit dieser Lösung einen Stich 

 ins Rötliche). Sic trübten sich hingegen schnell unter Chitinzersetzung, wenn 0,0(3 °/o Dikali- 

 phosphat die Lösung mit K und P versorgte, etwas langsamer, wenn Kaliumchlorid und 

 Trikalziumphosphat diesem Zweck dienten. Drei ganz entsprechende, mit gefälltem 

 Hummerchitin versetzte Lösungen gingen gut an, allerdings die alkalische und die neutrale 

 schneller als die sauer reagierende. Das Chitin von Crangon vulgaris scheint eine Spur 

 weniger Aviderstandsfähig zu sein- denn Lösungen, die gleiche Mengen von Mono- und 

 Dikaliumphosphat (je 0,03 °/o) enthielten, zeigten eine ganz langsame, schwache Bakterien- 

 entwicklung. Bei Vorhandensein von 0,0(3 °/o Monokaliumphosphat bleibt aber auch das 

 Crangon- Chitin unangegriffen. 



Sehr beachtenswert ist nun aber, daß der Bac. chitinovorus, wenn er andere Nahrung 

 als Chitin bezieht (vgl. weiter unten), auch bei deutlich saurer Reaktion ganz gut 

 gedeihen kann; die Empfindlichkeit gegen die Säuerung ist also offenbar in erster Linie 

 eine Eigenschaft des chitinspaltenden Enzyms. 



Um zu entscheiden, ob eine recht erhebliche Alkalinität die Chitinzersetzung günstig 

 beeinflußt, wurden noch Nährlösungen mit Zusatz von 0,2 °/o und 0,4 °/o Natriumkarbonat 

 hergestellt - , doch verlangsamte der erstere Zusatz die Zersetzung bereits, der letztere ver- 

 hinderte sie sogar vollkommen. 



Zuckerzusatz schädigt Reinkulturen ganz ebenso, wie Rohkulturen; diese Schädigung 

 wird in gleicher Weise durch Trauben- wie durch Rohrzucker bewirkt (1 — 2 °/o). Inversion 

 des letzteren findet nicht statt: Fehlingsche Lösung wird erst nach Kochen der Nährlösung 

 mit Säure reduziert. Die Reaktion von Chitin-Zuckerkulturen wird bald sauer; d. h. der 

 chitinzersetzende Bazillus führt selbst den Zucker in Säuren über und schädigt sich auf 

 diese Weise. Weiter zeigen aber die Reinkulturen, daß nicht lediglich die Säuerung hemmend 



