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nicht gefälltem Chitosan versehenen zeigten eine geringe, wohl auf Kosten von Verunreinigungen 

 erfolgte Trübung. Auch bei Kombination des Chitosans mit guten Nährstoffen (Glukosamin usw.) 

 wird es nicht im geringsten angegriffen , weder in alkalischer noch in saurer Lösung. Es 

 ist nach diesen Versuchsergebnissen so gut wie ausgeschlossen, daß sich die bakterielle 

 Zersetzung des Chitins so vollzieht, daß Chitosan als Zwischenprodukt des Abbaues auftritt. 



Durch Anfügen von Azetylestergruppen an das Chitosan — Erhitzen desselben mit 

 Essigsäureanhydrid im geschlossenen Rohr auf 135° — konnte Araki (1. c.) einen Körper 

 gewinnen, der sich auf Zusatz von Jodlösungen nicht mehr bläut und auch sonst Ähnlichkeit 

 mit Chitin zeigt, ohne mit ihm identisch zu sein. Solches mit Azetylestergruppen versehenes 

 Chitosan wurde ebenfalls hergestellt. Im Gegensatz zum Chitosan selbst erweist es sich als 

 vortreffliche Nahrung des Spaltpilzes, die vielleicht sogar dem Chitin an Güte etwas überlegen 

 ist Äußerlich ist der Anblick solcher Kulturen von dem chitinhaltiger um so weniger zu unter- 

 scheiden, als das mit Essigsäureanhydrid behandelte Chitosan, wie auch das Chitosan selbst, 

 durchaus die Form der Chitinstücke zeigt, aus denen es hergestellt wird. 



Salzsaures Glukosamin, nach Ledderhoses 1 ) Vorschrift aus Chitin dargestellt 

 und mehrfach umkristallisiert, erweist sich als ganz besonders geeignete Nahrung (Konzentration 

 z.B. 0,2 °/o) trotz der schwach sauren Reaktion seiner Lösung; Reduktion der Fehlingsehen 

 Lösung tritt bereits nach kurzer Kulturdauer nicht mehr ein, zum Zeichen dafür, daß das 

 Glukosamin zersetzt ist; viel Ammoniak ist dann nachweisbar, die Reaktion ins Alkalische 

 umgeschlagen. Schon nach etwa einem bis zwei Tagen weisen die Kulturgefäße dicke, 

 bräunliche Bakterienkahmhäute auf; durch Zufügen anderer Kohlenstoffquellen, z. B. Azetaten, 

 kann der Nährwert des Glukosamins noch gesteigert werden. Bei Herstellung dieser 

 Kulturen darf das Glukosamin nicht im Autoklaven sterilisiert werden, sonst findet unter 

 Bräunung und starker Säuerung Zersetzung statt, und die Lösung wird für Bakterienwachstum 

 untauglich, nicht nur wegen der Säurebildung, denn auch Kreidezusatz bessert die zersetzte 

 Lösung nicht wieder auf, sondern wegen der Entstehung anderer schädlicher Stoffe [Brenz- 

 katechin; vgl. Led der hose 2 )]. Das Glukosamin ist also trocken zu sterilisieren und dann 

 der Lösung beizufügen. Da es, wie erwähnt, außerordentlich gute Ernährungsbedingungen 

 gewährleistet, ist die Wahrscheinlichkeit vorhanden, daß es auch beim Abbau des Chitins durch 

 Bac. chitinovorus entsteht und im Momente der Bildung weiterverarbeitet wird, deshalb in 

 Chitinkulturen nicht nachweisbar ist. 



Eine ganz ausgezeichnete kombinierte Kohlenstoff-Stickstoffquelle ist, wie schon gesagt, 

 das Pepton-Witte. Auch Glykokoll (0,4 °/o) ist brauchbar; nur in der ersten Zeit ist das 

 Wachstum in glykokollhaltigen Lösungen etwas verlangsamt. Harnstoff ist untauglich 

 als Kohlenstoff-Stickstoffquelle; als alleinige Quelle für Stickstoffzufuhr, d. h. gemeinsam mit 

 Zucker dargeboten, aber brauchbar. 



Versuche mit verschiedenen Kohlenstoffquellen unter gleichzeitiger Darbietung von 

 Ammoniaksalzen oder Nitraten als Stickstoffquellen hatten folgende Ergebnisse: Trauben- 

 oder Rohrzucker, deren schädigende Wirkung auf die Chitiuzersetzung in Roh- wie 

 Reinkulturen schon erwähnt wurde, wirken in 1 ; , 2 /oiger Konzentration leidlich oder sogar 

 gut, wenn sie mit Ammoniaksalzen (0,1%), besser jedoch, wenn sie mit Nitraten (0,1%) 

 gleichzeitig zur Verfügung gestellt werden ; diese Überlegenheit der Nitrate erklärt sich damit, 

 daß durch deren Verarbeitung einer zu weitgehenden Säuerung entgegengewirkt wird. 

 Nitrathaltige Zuckerlösungen zeigen begreiflicherweise auch nach langer Kulturdauer keine 



!) Zeitschr. f. physiol. Chemie. 1878/79. Bd. 2. S. 213. 

 a ) Ebenda, 1880. Bd. 4. S. 139. 



