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Zur Untersuchung diente Material , das im wesentlichen mit 

 Sublimat oder Formol fixiert war ; für Embryonen scheint aber Pikrin- 

 säure bessere Resultate zu geben. Als Färbemittel bewährte sich 

 neben Säurekarmin nnd Hämalaun vor allem noch Ehrlich s Häma- 

 toxylin und Heidenhains Eisenhämatoxylin. Das Ausspringen des 

 Dotters beim Schneiden wurde durch Überstreichen des Blockes mit 

 sehr verdünntem Mastixkollodium leicht vermieden. 



E. Schoebel (Neapel). 



Philiptsclienko , J. , Beiträge zur Kenntnis der Aptery- 



g t e n. 2. Über die K o p f d r ü s e n d e r T h y s a n u r e n 



(Zeitschr. f. wiss. Zool. Bd. XCI, 1908, p. 93—111 m. 



2 Figg. u. 2 Tfln.). 



Ein Teil des Untersuchungsmaterials (Machilis , Ctenolepisma) 



wurde mit heißer Sublimat-Essigsäure , ein anderer (Campodea) mit 



heißer Jodjodkaliumlösung fixiert. Gefärbt wurden die Schnitte mit 



Hämatoxylin, Safranin, Thionin u. a. JE. Schoebel (Neapel). 



Montgomery, Th. H. jr., On the Matnration of Mitoses 

 and Fertilization ofthe EggofTheridium (Zool* 

 Jahrb., Morph. Abt., Bd. XXV, 1907, p. 237— 250 m. 2 Tfln.). 

 Die Eier wurden dem geöffneten Kokon entnommen und direkt 

 in die Fixierungsflüssigkeit getan , immer die eine Hälfte in das 

 GiLSONSche Gemisch (gesättigte Lösung von Sublimat in gleichen 

 Maßteilen von absolutem Alkohol, Eisessig und Chloroform), die andere 

 in das Tower sehe (95 Teile gesättigter Sublimatlösung in 35prozen- 

 tigen Alkohol, 2 Teile Eisessig und 3 Teile Salpetersäure). Letztere 

 Flüssigkeit wurde heiß, erstere kalt verwendet. Das Tower sehe 

 Gemisch gibt sehr gute Resultate vor der Furchung, aber nur selten 

 solche von späteren Stadien. Gilsons Flüssigkeit dagegen gibt aus- 

 gezeichnete Fixierung von den Kernteilungsfiguren aller Stadien und 

 hat den weiteren Vorteil die Eihülle so vom Ei zu trennen, daß sie 

 bequem abpräpariert werden kann , dafür aber den Nachteil , die 

 Eiform weniger gut zu erhalten und die äußere Dotterschicht von 

 der inneren abzuspalten, speziell während der ersten halben Stunde 

 nach der Eiablage. Vor dem Färben und Einbetten wurde die 

 äußere Eimembran immer entfernt. Die Entwässerung der Eier im 

 Alkohol wurde rasch vollzogen und dabei dem absoluten Alkohol 

 etwas Eosin zugesetzt, um die Eier leichter sichtbar für die Paraffin- 

 einbettun^ zu machen. Gefärbt wurden die Schnitte mit Delafields 



